i 
 

UNIVERSIDAD NACIONAL DE SAN CRISTÓBAL DE 

HUAMANGA 

 

FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS 

 

ESCUELA PROFESIONAL DE AGRONOMÍA 

 

REGULACIÓN DE MALEZAS EN EL CULTIVO DE QUINUA 

(Chenopodium quinoa Willd.) VARIEDAD NEGRA 

COLLANA. CANAÁN, 2 735 msnm – AYACUCHO 

 

 

TESIS PARA OBTENER EL TÍTULO PROFESIONAL DE: 

INGENIERO AGRÓNOMO 

 

 

PRESENTADO POR: 

JORGE EDISON HERRERA PARIONA 

 

 

AYACUCHO-PERÚ 
2017 

 



 

ii 
 

 

 

 

 

 

 

DEDICATORIA 

 

 

 

A Dios, mis abuelitos, quienes desde el 

cielo guían mi camino. A mis padres y 

mis hermanos, quienes han sido la guía 

y el camino para poder llegar a este 

punto de mi carrera. Que con su 

ejemplo, dedicación y palabras de 

alientos nunca bajaron los brazos para 

que yo tampoco lo haga aun cuando 

todo se complicaba.     

                        Los amo, 

 

              Edison Herrera P. 

 

 

 

 

 

 

 



 

iii 
 

AGRADECIMIENTO 

A la Universidad Nacional de San Cristóbal de Huamanga, alma mater de 

mi formación profesional. 

A la Facultad de Ciencias Agrarias, de especial aprecio a la Escuela de 

Formación Profesional de AGRONOMÍA y docentes, quienes 

contribuyeron con sus enseñanzas en la formación de mi carrera 

profesional. 

Agradecimiento especial al Ing. Walter Augusto Mateu Mateo, asesor del 

presente trabajo de investigación, por brindarme su apoyo incondicional. 

Al Ing. Eduardo Robles García por su valioso apoyo en la parte 

estadística de la investigación. 

A mis padres y hermanos por ser un soporte en mi vida, mi 

agradecimiento a ellos. 

A mis amigos, dentro y fuera de la universidad, por compartir su vida. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

iv 
 

ÍNDICE 

Pág. 

 

Dedicatoria           ii 

Agradecimiento         iii 

Índice           iv 

Introducción          1 

CAPÍTULO I: REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA  

A. Del cultivo         4 

1.1 Origen y distribución        4 

1.2 Taxonomía         6 

1.3 Valor nutritivo         7 

1.4 Descripción botánica de la planta      10 

1.5 Variabilidad genética        15 

1.6 Variedades de quinua       15 

1.7 Fases fenológicas        19 

1.8 Aspectos de manejo del cultivo      24 

1.9 Condiciones agroecológicas      31 

1.10 Plagas y enfermedades       32 

1.11 Rendimiento y productividad      34 

B. De las malezas        34 

1.12 Concepto         34 

1.13 Métodos de control de malezas      36 

1.14 Herbicida agrícola centurión (Clethodim)     39 

 

CAPÍTULO II: MATERIALES Y MÉTODOS  

2.1 Ubicación del experimento       42 

2.2 Antecedentes del campo experimental     42 

2.3 Condiciones climáticas       43 

2.4 Análisis físico - químico del suelo      46 

2.5 Características del cultivo       47 

2.6 Tratamientos en estudio       47 



 

v 
 

2.7 Diseño experimental y análisis estadístico    48 

2.8 Croquis del campo experimental      49 

2.9  Instalación y conducción del experimento     51 

2.10  Variables evaluadas        54 

2.11 Rentabilidad económica       57 

 

CAPÍTULO III: RESULTADOS Y DISCUSIÓN  

3.1 De la maleza         58 

3.2 Del cultivo         72 

 

CAPÍTULO IV: CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES  

4.1 Conclusiones         94 

4.2 Recomendaciones        95 

 

RESUMEN          96 

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS      98 

ANEXOS          104 

 



 

1 
 

 

 

 

 

 

 

 

INTRODUCCIÓN 

 

La quinua (Chenopodium quinoa Willd.), es un grano andino de la familia 

Chenopodiáceae, originario de los andes peruanos y de otros países 

sudamericanos, cultivada y domesticada en el Perú desde tiempos 

prehispánicos, se distribuye desde el nivel del mar hasta los 4 000 msnm 

siendo resistente a las adversidades climatológicas.  

 

La Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la 

alimentación (FAO), así como la organización Mundial de la Salud (OMS), 

han calificado a la quinua como un alimento único, por su altísimo valor 

nutricional que permite sustituir las proteínas de origen animal, además 

por su contenido balanceado en proteínas y nutrientes más cercano al 

ideal para el ser humano que cualquier otro alimento.  

 

La quinua, provee las proteínas y los aminoácidos esenciales como la 

metionina, fenilanina, treonina, triptófano y valina. La concentración de 

lisina en la proteína de la quinua es casi el doble con relación a otros 



 

2 
 

cereales y gramíneas. Contiene las vitaminas del complejo B, vitaminas C, 

E, tiamina, rivoflavina y un alto contenido de potasio y fósforo, entre otros 

minerales. 

 

El cultivo de la quinua, gracias a sus cualidades de resistencia a sequias y 

suelos salinos, hacen que sea considerado un cultivo andino para la 

seguridad alimentaria-nutricional mundial. Dentro de las principales 

regiones de producción son: Puno, que representa el 37 % de la 

producción nacional de este grano, le sigue Arequipa (20 %), Ayacucho 

(14 %) y Junín (8 %), con un área total de cultivo de alrededor de 65 000 

hectáreas (Ministerio de Agricultura año 2015). 

 

En este contexto, es importante esta investigación en el departamento de 

Ayacucho, una región aún de extrema pobreza, que cuenta con más del 

75 % de sus habitantes que dependen de la agricultura, debido a que uno 

de los factores más importantes que interviene en la disminución de los 

rendimientos, tanto cualitativa y cuantitativa de la quinua, vienen a ser la 

presencia de las malezas en los campos de cultivo, pues son plantas 

inoportunas y perjudiciales que compiten con los cultivos por nutrientes, 

agua, luz y espacio, por lo tanto, una de las prácticas de vital importancia 

en la producción agrícola, es el control eficiente y oportuno de las 

malezas, ya que no se trata de mantener el campo libre de malezas 

durante todo el periodo vegetativo del cultivo, sino en el momento en que 

la maleza causa el mayor daño y reduce significativamente la 

productividad. La regulación mecánica de malezas resulta bastante 



 

3 
 

dificultosa cuando el área cultivada es grande, requiere abundante mano 

de obra y un periodo relativamente largo. En la actualidad no existen 

herbicidas selectivos para la regulación de malezas en el cultivo de 

quinua, sin embargo, el Centurión es un herbicida sistémico, cuyo 

ingrediente activo es clethodim, que aplicado oportunamente y a una 

dosis óptima puede constituir una alternativa en la regulación de malezas, 

razón por la cual se realizó el experimento con los siguientes objetivos:  

1. Evaluar la influencia de la regulación de malezas, con herbicida 

clethodim y regulación mecánica, en el rendimiento de grano de 

quinua. 

2. Determinar el tratamiento adecuado de regulación de malezas en el 

rendimiento de grano de quinua variedad Negra Collana. 

3. Estudiar el mérito económico de los tratamientos. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

4 
 

 

 

 

 

 

 

 

CAPÍTULO I 

REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA 

 

A. DEL CULTIVO 

1.1 ORIGEN Y DISTRIBUCIÓN 

Apaza (2005) menciona que la quinua posiblemente fue cultivada en los 

andes Peruanos, Bolivianos y Ecuatorianos desde hace 3 000 a 5 000 

años. 

 

Zevallos (1984) señala que el lugar de origen de la quinua no es conocido 

exactamente, se cree que sea Sud-América, probablemente la Hoya del 

Titicaca (Perú - Bolivia) ya que en esta zona se puede encontrar la mayor 

cantidad de variedades y escapes de esta especie.  

 

León (2003) sostiene que el origen de la quinua es muy difícil de señalar, 

porque no se conoce en estado nativo. Pues las plantas silvestres 

encontradas en el Perú y Bolivia, son más bien escapes del cultivo. 



 

5 
 

La FAO (2013) menciona que la quinua (Chenopodium quinoa Willd.) ha 

sido descrito por primera vez botánicamente por Willdenow en 1778, 

como una especie nativa de Sudamérica, cuyo centro de origen, según 

Bukasov se encuentra en los Andes de Bolivia y Perú (Cárdenas, 

1994). Esto fue corroborado por Gandarillas (1979) quien indica que su 

área de dispersión geográfica es bastante amplia, porque allí se 

encuentra la mayor diversidad de ecotipos tanto cultivados técnicamente 

como en estado silvestre. 

 

Humboldt (1942) creyó que había sido domesticada por los Chibchas en 

Colombia, sin embargo, esta especie presenta una mayor variación y un 

cultivo más intenso en el altiplano Peruano – Boliviano. Restos 

arqueológicos de la quinua, especialmente semillas, se han encontrado 

en Argentina, Chile y Perú. En este último país se hallaron en sitios de la 

costa que pertenecieron al “periodo formativo”. Desde el punto de vista de 

la variabilidad genética, la zona andina comprende uno de los ocho 

mayores centros de domesticación de plantas cultivadas del mundo, 

dando origen a uno de los sistemas agrícolas más sostenibles y con 

mayor diversidad genética en el mundo, la quinua es una planta andina 

que muestra la mayor distribución de formas, diversidad de genotipos y de 

progenitores silvestres, en los alrededores del Lago Titicaca de Perú y 

Bolivia, encontrándose la mayor diversidad entre Potosí - Bolivia y Sicuani 

(Cusco) - Perú. Existen evidencias claras de la distribución de los 

parientes silvestres, botánicas y citogenéticas, lo que posiblemente 

demuestra que su domesticación tomó mucho tiempo. 



 

6 
 

1.2 TAXONOMÍA 

Este cultivo fue descrito por primera vez por el científico Alemán Luis 

Christian Willdenow en 1778. 

 

Aguilar (1981) manifiesta que esta especie taxonómicamente se le ubica 

de la siguiente manera: 

Reino  : Vegetal 

División : Fanerógamas 

Clase  : Dicotiledóneas 

Sub clase : Angiospermas 

Orden  : Centrospermas 

Familia : Chenopodiáceas 

Género : Chenopodium 

Sección : Chenopodia 

Subsección : Cellulata 

Especie  : Chenopodium quinoa Willd. 

 

Nombres comunes 

Mujica (1997) menciona que la quinua recibe diferentes nombres en el 

área andina, que varían entre localidades y de un país a otro, así como 

también recibe nombres que varían según los diferentes idiomas. 

 Perú : quinua, quiuna. 

 Ecuador : quinua, juba, ubaque, uvate. 

 Bolivia : quinua, jupha, jiura. 

 Chile : quinua, quingua, dahuie. 



 

7 
 

Según el idioma: 

 Español : quinua, quinoa, triguillo, trigo inca, arrocillo, arroz del Perú. 

 Inglés : Quinoa, quinua, kinoa, swet quinoa, peruvian rice, inca rice. 

 Quechua : kiuna, quinua, parca. 

 

1.3 VALOR NUTRITIVO  

Apaza y Delgado (2005) manifiestan que esta especie constituye uno de 

los principales componentes de la dieta alimentaria de los pobladores de 

los Andes, no tiene colesterol, no forma grasas en el organismo, es fácil 

digestible, es un producto natural y ecológico. La quinua es la fuente 

natural de proteína vegetal, de alto valor nutritivo por la combinación de 

mayor proporción de aminoácidos esenciales, el valor calórico es mayor 

que otros cereales, tanto en grano y en harina alcanza 350 Cal/100 g que 

lo caracteriza como un alimento apropiado para zonas y épocas frías.  

 
Cuadro 1.1: Valor nutricional de la quinua 

Valor nutritivo/100 g de productos frescos (promedio) 

Componentes Cantidad 

Humedad 12.60 % 
Proteínas 12-16 % 
Carbohidratos 59,70 % 
Fibras 
Cenizas 
Grasas 

4,10 % 
3,30 % 
4-9 % 

Lisina 0,88 % 
Metionina 0,42 % 
Triptófano 0,12 % 
Tiamina b1 0.24 mg 
Riboflavina b2 
Niacina 

0.23 mg 
1.40 mg 

Vitamina c 8.50 mg 
Calcio 100 mg 
Hierro 9.21 mg 
Fósforo 448 mg 

Calorías 370 kcal 

Fuente: Diccionario Enciclopédico de plantas útiles del Perú.Brack Egg.,  
    (PNUD) Technology of cereals, Kent, N.L. (Pergamon Press) 1999 



 

8 
 

Apaza y Delgado (2005) mencionan que el grano de quinua contiene de 

14 a 18 % de proteína, grasa de 5.7 % a 11.3 % y fibra de 2.7 a 4.2 %. 

Las proteínas de quinua presentan una proporción de aminoácidos más 

balanceada que las de los cereales, especialmente lisina, histidina y 

metionina, lo que le proporciona una alta calidad. 

 

Cuadro 1.2: Comparativo de los componentes de la quinua con otros 

productos (100 g/materia seca). 

  Proteína Grasa Fibra cruda Cenizas Carbohidratos 

Trigo Ingles 10.9 2.6 2.5 1.8 78.6 

Cebada 11.8 1.8 5.3 3.1 78.1 

Avena 11.6 5.2 10.4 2.9 69.8 

Centeno 13.4 1.8 2.6 2.1 80.1 

Arroz 9.1 2.2 10.2 7.2 71.2 

Maíz 11.1 4.9 2.1 1.7 80.2 

Sorgo 12.4 3.6 2.7 1.7 79.7 

Quinua 14.4 6 4 2.9 72.6 

Kiwicha 14.5 6.4 5 2.6 71.5 

Fuente: Repo-Carrasco, 1992. 
 

Mujica (1993) la quinua tiene múltiples usos y se puede emplear casi 

todas sus partes en la alimentación humana, animal (forraje y 

concentrados), medicinales, industriales, tutor en siembras asociadas con 

hortaliza, en ritos ceremoniales y creencias populares en diversos lugares 

donde se produce el cultivo de quinua. Los granos se utilizan previa 

eliminación del contenido amargo (saponina del epispermo) en forma de 

guisos, sopas, postres, bebidas, pan, galletas y tortas; pudiendo 

prepararse en más de 100 formas diferentes. 

 

Muñoz (2010) indica que la quinua está considerada como uno de los 

granos más ricos en proteína, dado por los aminoácidos que la constituye 



 

9 
 

como: la leucina, isoleucina, metionina, fenilanina, treonina, triptófano y 

valina. 

 

Proteínas 

La cantidad de proteínas en la quinua depende de la variedad, con un 

rango comprendido entre un 10.4 % y un 18.0 % de su parte comestible. 

 

La proteína está compuesta por aminoácidos, ocho de los cuales están 

considerados esenciales tanto para niños como para adultos. Tal y como 

se muestra en el cuadro 1.3 la quinua supera las recomendaciones para 

los 8 aminoácidos esenciales. 

 

Cuadro 1.3: Comparación de los perfiles de los alimentos esenciales de 

la quinua con otros granos. 

    gr/100 gr. de proteína 

Aminoácido Quinua Maíz Arroz Trigo 

Isoleucina 4.9 4 4.1 4.2 

Leucina 6.6 12.5 8.2 6.8 

Lisina 6 2.9 3.8 2.6 

Metionina 5.3 4 3.6 3.7 

Fenilanina 6.9 8.6 10.5 8.2 

Treonina 3.7 3.8 3.8 2.8 

Triptófano 0.9 0.7 1.1 1 

Valina 4.5 5 6.1 4.4 

Fuente: Koziol (1992) 

 

Vitaminas 

En el cuadro 1.4 se presenta las vitaminas en el grano de quinua. La 

vitamina A, que es importante para la visión, la diferenciación celular, el 

desarrollo embrionario, la respuesta inmunitaria, el apetito y el desarrollo 



 

10 
 

está presente en la quinua en rango de 0.12 a 0.53 mg/100 g de materia 

seca (Olso, 1997, citado por Ayala et al., 2004). 

 

Vitamina E tiene propiedades antioxidantes e impide la peroxidación de 

los lípidos, protege al sistema nervioso, el músculo y la retina de la 

oxidación (Olso, 1997, citado por Ayala et al., 2004). 

 

Cuadro 1.4: Contenido de vitaminas en el grano de quinua (mg/100 g de 

materia seca). 

Vitaminas Rango 

Vitamina A (carotenos) 0.12 - 0.53 

Vitamina E 4.60 - 5.90 

Tiamina 0.05 - 0.60 

Riboflavina 0.20 - 0.46 

Niacina 0.16 - 1.60 

Ácido ascórbico 0.0 - 8.50 

             Fuente: Ruales et al., 1992, citado por Ayala et al., 2004 

 

1.4 DESCRIPCIÓN BOTÁNICA DE LA PLANTA 

Mujica (1997) indica que es una planta herbácea anual, de amplia 

dispersión geográfica, presenta características peculiares en su 

morfología, coloración y comportamiento en diferentes zonas 

agroecológicas donde se cultiva. 

 

1.4.1 Planta 

Mujica (1997) menciona que la planta, es erguida, alcanza alturas 

variables desde 30 a 250 cm dependiendo del tipo de quinua, de los 

genotipos, de las condiciones ambientales donde crece y de la fertilidad 

de los suelos; las de valle tienen mayor altura que las que crecen por 



 

11 
 

encima de los 4 000 msnm y de zonas frías, en zonas abrigadas y fértiles 

las plantas alcanzan las mayores alturas, su coloración varía con los 

genotipos y fases fenológicas, está clasificada como planta C3, el primer 

carbono estable es el ácido fosfoglicérido. 

 

1.4.2 Raíz 

Mujica (1997) menciona que la raíz es pivotante, vigorosa, profunda, 

bastante ramificada y fibrosa, la cual posiblemente le de resistencia a la 

sequía y buena estabilidad a la planta, se diferencia fácilmente la raíz 

principal de las secundarias que son en gran número, a pesar de que 

pareciera ser una gran cabellera, esta se origina del periciclo, variando el 

color con el tipo de suelo donde crece, al germinar lo primero que se 

alarga es la radícula, que continúa creciendo y da lugar a la raíz, 

alcanzando en casos de sequía hasta 1.80 m de profundidad, y teniendo 

también alargamiento lateral, sus raicillas o pelos absorbentes nacen a 

distintas, se diferencia la raíz principal de las secundarias que son en gran 

número y se originan en el periciclo. 

 

1.4.3 Tallo 

Mujica (1997) menciona que el tallo es cilíndrico en el cuello de la planta y 

anguloso a partir de las ramificaciones, puesto que las hojas son alternas 

dando una configuración excepcional, el grosor del tallo también es 

variable siendo mayor en la base que en el ápice, dependiendo de los 

genotipos y zonas donde se desarrolla, existen genotipos ampliamente 

ramificados (quinuas de valle), incluso desde la base (quinuas del nivel 



 

12 
 

del mar) y otros de tallo único (quinuas del altiplano), así como genotipos 

intermedios, dependiendo del genotipo, densidad de siembra y 

disponibilidad de nutrientes. 

 

1.4.4 Hojas 

Mujica (1993) señala que las hojas son alternas y están formadas por 

peciolo y lámina, los peciolos son largos, finos y acanalados en su parte 

superior y de longitud variable dentro de la misma planta, la lámina es 

polimorfa en la misma planta, de forma romboidal, triangular o lanceolada, 

plana u ondulada, algo gruesa, carnosa y tierna, cubierta por cristales de 

oxalato de calcio, de colores rojo, púrpura o cristalino, tanto en el haz 

como en el envés, las cuales son bastante higroscópicas, captando la 

humedad atmosférica nocturna, controlan la excesiva transpiración por 

humedecimiento de las células, así como reflejan los rayos luminosos 

disminuyendo la radiación directa sobre las hojas, evitando el sobre 

calentamiento, presentando bordes dentados, aserrados o lisos, variando 

el número de dientes con los genotipos, desde unos pocos hasta cerca de 

25, el tamaño de la hoja varía, en la parte inferior grandes, romboidales y 

triangulares y en la superior pequeñas y lanceoladas, que muchas veces 

sobresalen de la inflorescencia. La coloración de la hoja es muy variable 

del verde al rojo con diferentes tonalidades y puede medir hasta 15 cm de 

largo por 12 cm de ancho, presenta nervaduras muy pronunciadas y 

fácilmente visibles, que nacen del peciolo y que generalmente son en 

número de tres, existen genotipos que tienen abundante cantidad de 

hojas y otros con menor cantidad de hojas. 



 

13 
 

1.4.5 Inflorescencia 

Apaza (2005) refiere que la inflorescencia es una panoja típica, 

constituida por un eje central, ejes secundarios y terciarios, que sostienen 

a glomérulos (grupo de flores). La longitud de la panoja varía entre 29 a 

55 cm y el diámetro entre 6 y 12.7 cm. La panoja puede llegar a un peso 

de 91.10 a 114 g incluyendo el grano. Cuando los glomérulos nacen del 

eje secundario la panoja es glomerulada, si los glomérulos nacen de ejes 

terciarios la panoja es amarantiforme y si los ejes son largos, la panoja es 

laxa y toda la panoja tiene la forma de un solo glomérulo, de acuerdo a la 

densidad de panoja se clasifican en: Laxa cuando los glomérulos insertos 

al raquis son bastante separados. Intermedia se caracteriza cuando los 

glomérulos insertos al raquis no están muy separados entre sí. 

Compactas cuando los glomérulos insertos al raquis se encuentran 

bastante tupidos. 

 

1.4.6 Flores 

Apaza y Delgado (2005) mencionan que las flores carecen de pétalos, 

pueden ser hermafroditas (pistilo y estambres) ubicadas en la parte 

superior del glomérulo, pistiladas (femeninas), ubicadas en la parte 

inferior del glomérulo y androestériles (pistilo y estambres estériles). Los 

tres tipos de flores pueden estar presentes en la misma planta. Por lo 

general las flores presentan un perigonio con cinco sépalos y un gineceo 

con estigma central con dos o tres ramificaciones estigmáticas, flores tetra 

ováricas de 3, 4, 6 y 7 estambres. 



 

14 
 

1.4.7 Fruto 

Mujica (1993) afirma que el fruto es un aquenio, que se deriva de un 

ovario súpero unilocular y de simetría dorsiventral, tiene forma cilíndrico- 

lenticular, levemente ensanchado hacia el centro, en la zona ventral del 

aquenio se observa una cicatriz que es la inserción del fruto en el 

receptáculo floral, está constituido por el perigonio que envuelve a la 

semilla por completo y contiene una sola semilla, de coloración variable, 

con un diámetro de 1.5 a 4 mm la cual se desprende con facilidad a la 

madurez fisiológica y en algunos casos puede permanecer adherido al 

grano por mucho tiempo incluso después de la trilla dificultando la 

selección.  

 

1.4.8 Semilla 

Mujica (1993) menciona que la semilla presenta tres partes bien definidas 

que son: epispermo, embrión y perispermo. El epispermo, está constituido 

por cuatro capas: una externa de superficie rugosa, quebradiza, la cual 

fácilmente se desprende al frotarla, en ella se ubica la saponina que le da 

el sabor amargo al grano y cuya adherencia a la semilla es variable con 

los genotipos, la segunda capa es muy delgada y lisa, se observa solo 

cuando la capa externa es traslucida, la tercera capa es de coloración 

amarillenta y la cuarta capa es traslúcida. El embrión está formado por 

dos cotiledones y la radícula y constituye el 30 % el volumen total de la 

semilla, el cual envuelve al perispermo como un anillo, con una curvatura 

de 320°, es de color amarillo, mide 3,54 mm de longitud y 0,36 mm de 

ancho. La radícula muestra una pigmentación de color castaño oscuro. El 



 

15 
 

perispermo es el principal tejido de almacenamiento y está constituido 

principalmente por granos de almidón, es de color blanquecino y 

representa prácticamente el 60 % de la superficie de la semilla, sus 

células son grandes de mayor tamaño que las del endospermo, de forma 

poligonal con paredes delgadas.  

 

1.5 VARIABILIDAD GENÉTICA 

León (2003) menciona que la quinua es una especie tetraploide, 

constituido por 36 cromosomas somáticas, está constituido por 4 

genomios, con un numero básico de 9 cromosomas (4n = 4 x 9 = 36). El 

color de las plantas de quinua es un carácter simple; en cambio el color 

de los granos es por la acción de agentes complementarios, siendo el 

color blanco un carácter recesivo. En quinua el tipo de inflorescencia 

puede ser amarantiforme o glomerulada, siendo esta última dominante 

sobre la primera. 

 

El contenido de saponina en quinua es heredable, siendo recesivo el 

carácter dulce. La saponina se ubica en la primera membrana. Su 

contenido y adherencia en los granos es muy variable y ha sido motivo de 

varios estudios y técnicas para eliminarla, por el sabor amargo que 

confiere el grano. 

 

1.6 VARIEDADES DE QUINUA 

La amplia variabilidad genética de la quinua le permite adaptarse a 

diversos ambientes ecológicos (valles interandinos, altiplano, yungas, 



 

16 
 

salares, nivel del mar) con diferentes condiciones de humedad relativa, 

altitud (desde el nivel del mar hasta los 4 000 metros de altitud) y es 

capaz de hacer frente a cambios de temperatura que oscilan entre -8 °C 

hasta 38 °C. Según información del Instituto Nacional de Innovación 

Agraria (INIA) existen alrededor de 100 cultivares de quinua. En el Perú 

existen aproximadamente 3 mil ecotipos de quinua de las cuales el INIA 

conserva el material genético de alrededor de 2 mil ecotipos. El INIA ha 

puesto a disposición de los productores agrarios a nivel nacional 8 

cultivares mejorados que responden a la demanda tecnológica de los 

productores de quinua del país como: tolerancia a factores climáticos 

adversos, mayor rendimiento, mejor calidad de grano y aptitud para 

procesamiento agroindustrial, resistencia a enfermedades y plagas. 

 

INIA 415 - PASANKALLA 

Es una variedad obtenida en el año 2006 por selección planta surco de 

ecotipos de la localidad de Caritamaya, distrito de Acora, provincia de 

Puno. Su mejor desarrollo se logra en la zona agroecológica Suni del 

Antiplano, entre los 3 815 y 3 900 msnm. Tiene grado de color vino 

oscuro, dulce (0,001 % de saponina) con 17,4 % de proteínas y de muy 

buena calidad para el procesamiento industrial en expandidos. Se 

caracteriza por su alta productividad, alcanza un rendimiento potencial de 

4.5 t.ha-1 y de buena calidad de grano. Se adapta en valles interandinos y 

costa (Obtentor, Ing. Vidal Apaza - INIA). 

 



 

17 
 

INIA 420 - NEGRA COLLANA 

La variedad INIA 420 - NEGRA COLLANA, es de amplia base genética, 

ya que es un compuesto formado por 13 accesiones provenientes de 12 

localidades, comúnmente conocidas como “quytujiwras”. Comercialmente 

se le asigna el nombre de INIA 420 - NEGRA COLLANA, y es el resultado 

de pruebas de identificación, adaptación y eficiencia desarrolladas 

participativamente con productores de las comunidades campesinas: 

Collana, Collpa, Cieneguilla, Vizcachani, Ilave, Mañazo y Pilcuyo de la 

Región Puno. Liberada en el año 2008, su grano es de color negro y dulce 

(contenido de saponina 0,015 %) con extraordinarias cualidades 

nutraceúticas que la hacen importante para el consumo humano. Posee 

un alto valor proteico (17,85 %), además es rica en aminoácidos 

esenciales. Tiene buen potencial de rendimiento de grano 2.5 a 3.0 t.ha-1, 

precocidad, tolerancia a bajas temperaturas y a enfermedades (Obtentor, 

Ing. Vidal Apaza – INIA). 

 

QUILLAHUAMÁN INIA 

Originaria del valle del Vilcanota (Cusco), fue liberada en el año 1990. 

Destaca por su amplia adaptación a diversos pisos ecológicos que van 

desde el nivel del mar hasta los 3 500 msnm de altitud. Tiene un alto 

potencial de rendimiento en campo de agricultores alcanzando los 3 500 

kg.ha-1. Su grano es de tamaño mediano, color blanco - crema y con bajo 

contenido de saponina. 

 



 

18 
 

SALCEDO INIA 

Es una variedad obtenida del cruce de las variedades “Real Boliviana” por 

“Sajama” en 1995. Liberada en el año 1995, es una quinua de grano 

blanco, grande y dulce, con contenido de saponina de 0,014 % y 

contenido de proteínas de 14,5 %. Esta variedad tiene buen potencial de 

rendimiento en campo de agricultores, tolerancia a enfermedades, así 

como a heladas y sequías. Es requerida por la agroindustria y mercado 

exterior. Se adapta en valles interandinos y en la costa (Obtentor, Ing. 

Vidal Apaza – INIA). 

 

INIA 427 - AMARILLA SACACA 

Esta variedad liberada en el año 2011, destaca por su alto rendimiento de 

hasta 3 500 kg.ha-1, superior al de las variedades comerciales cultivadas 

en la Región Cusco, además por su tolerancia a mildiu. De grano amarillo 

anaranjado y tamaño grande, posee un periodo vegetativo de 195 a 210 

días, con alto contenido de saponina y con 14,83 % de proteína 

(Obtentores R. Estrada, V. Gonza – INIA – 2011). 

 

ILLPA INIA 

Variedad obtenida en el año 1997, que se caracteriza por su grano de 

color blanco, tamaño grande, con mínimo contenido de saponina (0,02 

%), por lo que es considerada una quinua dulce, contenido de proteína de 

16,14 %. Destaca por su buen rendimiento en campo de agricultores 

alcanzando en promedio 3 100 kg.ha-1, tolerancia a enfermedades y 

heladas.  



 

19 
 

INIA 431 - ALTIPLANO 

Variedad liberada en el año 2013, es una quinua de grano grande blanco 

y dulce, con contenido de saponina de 0,03 % y mayor contenido de 

proteína (16,9 %). Esta variedad tiene buen potencial de rendimiento en 

campo de agricultores, tolerancia a enfermedades, así como a sequía. Es 

requerida por la agroindustria y mercado exterior. Adaptación en costa. 

 

INIA 433 – SANTA ANA/AIQ/FAO 

Variedad liberada en el año 2013, se caracteriza por su grano de color 

blanco cremoso, de tamaño grande y bajo contenido de saponina. Tiene 

buen potencial de rendimiento, hasta 3.5 t.ha-1 y es tolerante a la mancha 

ojival del tallo (Phoma sp). Se recomienda su cultivo desde los 2 800 a     

3 700 msnm. 

 

1.7 FASES FENOLÓGICAS 

León (2003) argumenta que la duración de las fases fenológicas depende 

mucho de los factores ambientales que se presenta en cada campaña 

agrícola, las cuales permite identificar los cambios que ocurre durante su 

desarrollo.  

 

Apaza (2005) señala que las fases fenológicas consisten en la aparición 

de las diferentes fases vegetativas cuya sucesión constituye el 

crecimiento y desarrollo de la planta durante su ciclo biológico. Según la 

variedad y condiciones del medio ambiente, el ciclo biológico de la quinua 

es de 150 a 180 días. Sobre el desarrollo de la planta, influye tanto el 

genotipo como el ambiente. 



 

20 
 

Mujica y Cahuana (1989) sostiene que la quinua presenta fases 

fenológicas bien marcadas y diferenciables, las cuales permiten identificar 

los cambios que ocurren durante el desarrollo de la planta, se ha 

determinado las siguientes fases fenológicas. 

 

1.7.1 Germinación  

León (2003) manifiesta que la germinación es cuando la plántula emerge 

del suelo y extiende las hojas cotiledonales, pudiendo observarse en el 

surco las plántulas en forma de hileras nítidas; si el suelo es húmedo, la 

semilla emerge al cuarto día o sexto día de la siembra.  

 

Apaza (2005) indica que esto sucede de 6 a 8 días de la siembra, los 

cotiledones emergen a la superficie del suelo, la raíz empieza a 

desarrollarse, por el cual la plántula inicia a abastecerse de agua y 

nutrientes del suelo, se inicia el proceso de fotosíntesis. 

 

1.7.2 Dos hojas verdaderas 

León (2003) señala que esta fase ocurre a los 10 a 15 días después de la 

siembra y muestra un crecimiento rápido en las raíces. En esta fase la 

planta también es resistente a la falta de agua, pueden soportar de 10 a 

14 días sin la necesidad del agua.  

 

Apaza (2005) menciona que esta fase ocurre de 16 a 20 días de la 

siembra, las plántulas miden de 1.5 a 2 cm de altura, longitud de hoja 0.7 

a 1.0 cm, ancho de hoja 0.3 a 0.6 cm y longitud de raíz 6.5 a 8.3 cm. 



 

21 
 

1.7.3 Cuatro hojas verdaderas 

Apaza (2005) afirma que ocurre entre 38 a 42 días después de la 

siembra. Fase fenológica critica en presencia de veranillos prolongados, 

competencia de malezas y ataque de gusanos cortadores.  

 

Mujica y Canahua (1989) indican que esta fase ocurre entre los 25 a 30 

días después de la siembra, en esta fase la plántula muestra buena 

resistencia al frío y sequía, pero es susceptible al ataque de masticadores 

de hojas. 

 

1.7.4 Seis hojas verdaderas 

León (2003) refiere que esta fase ocurre aproximadamente a los 35 a 45 

días después de la siembra, en la cual se nota claramente una protección 

del ápice vegetativo por las hojas más adultas. 

 

1.7.5 Ramificación 

León (2003) señala que durante la ramificación se observa ocho hojas 

verdaderas extendidas con presencia de hojas axilares hasta el tercer 

nudo, las hojas cotiledonales se caen y dejan cicatrices en el tallo, 

también se nota presencia de inflorescencia protegida por las hojas sin 

dejar al descubierto la panoja, ocurre aproximadamente a los 45 a 50 días 

después de la siembra, durante esta fase se efectúa el aporque y 

fertilización. 

 



 

22 
 

1.7.6 Inicio de panojamiento 

Mujica y Canahua (1989) manifiestan que en esta fase la inflorescencia se 

nota que va emergiendo del ápice de la planta, observándose alrededor 

aglomeración de hojas pequeñas, las cuales van cubriendo la panoja en 

sus tres cuartas partes; ello puede ocurrir aproximadamente a los 55 a 60 

días después de la siembra, así mismo se puede apreciar amarillamiento 

del primer par de hojas verdaderas y se produce una fuerte elongación del 

tallo, así como engrosamiento. 

 

1.7.7 Panojamiento 

León (2003) menciona que en esta fase la inflorescencia sobresale con 

claridad por encima de las hojas, notándose los glomérulos que la 

conforman; así mismo, se puede observar en los glomérulos de la base 

los botones florales individualizados, puede ocurrir aproximadamente a 

los 65 a 75 días después de la siembra, a partir de esta etapa hasta inicio 

de grano lechoso se puede consumir las inflorescencias en reemplazo de 

las hortalizas de inflorescencia tradicionales, como por ejemplo a la 

coliflor. 

 

1.7.8 Inicio de floración 

Apaza (2005) sostienen que la floración inicia en la parte apical de la 

panoja y continúa hasta la base, se da a los 80 a 90 días después de la 

siembra. 

 



 

23 
 

Mujica y Canahua (1989) afirman que la fase se da cuando la flor 

hermafrodita apical se abre mostrando los estambres separados, 

aproximadamente puede ocurrir a los 75 a 80 días después de la siembra, 

en esta fase es bastante sensible a la sequía con helada. 

 

1.7.9 Floración o antesis 

Apaza (2005) señala que es fase crítica para el ataque de mildiú, 

presencia de heladas y granizo prolongados, que hacen infértil al polen. 

Es adecuado para la evaluación de la incidencia de mildiú, la floración se 

da a los 95 a 130 días después de la siembra. 

 

1.7.10  Grano lechoso 

León (2003) refiere que el estado de grano lechoso es cuando los frutos 

que se encuentran en los glomérulos de la panoja, al ser presionados 

explotan y dejan salir un líquido lechoso, aproximadamente ocurre a los 

100 a 130 días después de la siembra, en esta fase el déficit hídrico es 

sumamente perjudicial para el rendimiento disminuyéndolo drásticamente. 

 

1.7.11  Grano pastoso 

Mujica y Canahua (1989) señalan que el estado de grano pastoso es 

cuando los granos al ser presionados presentan una consistencia pastosa 

de color blanco, puede ocurrir a los 130 a 160 días después de la 

siembra, en esta fase el ataque de Eurysacca melanocampta “Kcona-

kcona” y aves (gorriones, palomas) causa daños considerables al cultivo, 

formando nidos y consumiendo el grano. 



 

24 
 

1.7.12  Madurez fisiológica 

León (2003) indica que la madurez fisiológica es cuando el grano formado 

presenta resistencia a la penetración de las uñas por la presión, esto 

ocurre a los 160 a 180 días después de la siembra, el contenido de 

humedad del grano varia de 14 a 16 % y el lapso comprendido de la 

floración a la madurez fisiológica viene a constituir el periodo de llenado 

del grano, asimismo en esta etapa ocurre un amarillamiento y defoliación 

completa de la planta. En esta fase la presencia de lluvia es perjudicial 

por que hace perder la calidad y sabor del grano. 

 

1.8 ASPECTOS DE MANEJO DEL CULTIVO 

1.8.1   La preparación del suelo 

Mujica (1997) manifiesta que la preparación del suelo es una labor muy 

importante, que determinara el éxito futuro de la instalación del cultivo. Si 

la siembra se efectuara en un suelo nuevo o virgen se debe roturar con un 

arado de vertedera o de discos de tal manera que la parte externa quede 

enterrada en el suelo, esta labor debe efectuarse al finalizar las lluvias, 

esto implica en la zona andina en el mes de marzo o inicios de abril, luego 

proceder a mullir el suelo con una rastra cruzada de discos o picos ya sea 

rígidos o flexibles de acuerdo a la textura del suelo; esto permitirá que se 

produzca una rápida descomposición del material orgánico. Para que 

garantice una buena germinación de la semilla y crecimiento de las raíces 

de la planta. 

 



 

25 
 

Próximo a la fecha de siembra se procederá nuevamente a desmenuzar 

el terreno pasando una rastra cruzada de manera que el suelo quede en 

condiciones óptimas. El día que se efectúa el surcado del terreno con 

distanciamiento adecuado a la variedad utilizada, se debe realizar la 

siembra. 

 

1.8.2 La siembra 

Mujica (1997) manifiesta que la siembra se debe realizar cuando las 

condiciones ambientales sean las más favorables. Esto está determinado 

por una temperatura adecuada de 15 a 20 °C, humedad del suelo por lo 

menos en 3/4 de capacidad de campo, que facilitará la germinación de las 

semillas. 

Las actividades de la siembra son las siguientes: 

 

 Densidad de siembra 

Mujica (1997) señala la cantidad de semilla por hectárea es de 8 a 12 

kg.ha-1, para la siembra en surcos es de 8 a 10 kg.ha-1, para la siembra al 

voleo es de 12 kg.ha-1 y para la siembra por trasplante es de 1 kg.ha-1. En 

general la cantidad de semilla a utilizar busca obtener un cultivo con una 

densidad por metro lineal de 15 a 20 plantas. 

 

 Época de siembra 

Mujica (1997) manifiesta la época más oportuna de siembra dependerá de 

las condiciones ambientales del lugar de siembra, generalmente en la 

zona andina, en el altiplano la costa, es del 15 de setiembre al 15 de 



 

26 
 

noviembre, lógicamente se puede adelantar o retrasar un poco de 

acuerdo a la disponibilidad de agua y a la precocidad o duración del 

período vegetativo de los genotipos a sembrarse, en zonas más frías se 

acostumbra adelantar la fecha de siembra sobre todo si se usan 

genotipos tardíos. 

 

1.8.3 Fertilización y Abonamiento 

Mujica (1993) recomienda fertilización con la fórmula 80 - 40 - 00, para 

la sierra del Perú, ya que nuestros suelos son pobres en nitrógeno, 

medianos en fósforo y ricos en potasio. 

 

Tapia (1979) menciona que la quinua responde bien a la fertilización 

química y al abonamiento; en suelos de baja fertilidad, se recomienda 

aplicar 80 - 40 - 30 kg.ha-1 de NPK, se debe aplicar el 50 % de nitrógeno y 

el total de fósforo y potasio a la siembra y el otro 50 % de nitrógeno en el 

momento del aporque, se puede también aplicar de 5 a 10 t.ha-1 de abono 

orgánico como el guano de isla, la gallinaza y el estiércol de animales. La 

incorporación al suelo debe ser de acuerdo a la fertilidad del suelo, en 

consecuencia, sería como alternativa a la fertilización química, 

incorporando al suelo antes de la siembra. 

 

1.8.4 Labores de cultivo 

 Deshierbo 

Mujica (1997) refiere realizar el deshierbo para evitar la competencia entre 

cultivo y maleza, fundamentalmente por agua, luz, nutrientes y suelo 



 

27 
 

(espacio); recomendándose hacerse el primer deshierbo cuando las 

plantas de quinua alcancen 20 cm de altura (a los 40 a 50 días después 

de la siembra); el segundo deshierbo se debe realizar cuando las plantas 

alcancen una altura de 30 a 35 cm.  

 

Se tiene como malezas importantes en este cultivo las siguientes: Bidens 

pilosa “amor seco” “Chiriro”, Medicago hispida “trébol carretilla”, Poa 

annua “pasto o ccacho”, Bromus uniloides “cebadilla”, Erodium cicutarium 

“auja auja”, Trifolium amabile “layo”, Tagetes mandonii “chicchipa”, 

Brassica campestris “nabo silvestre” y etc. 

 

 Depuración 

Mujica (1997) menciona que consiste en eliminar plantas que están 

enfermas, que son diferentes a la variedad del cultivo, para lo cual se 

recomienda eliminar las plantas de tipo diferentes en dos momentos: 

antes de la floración, observando el color de la planta, el tipo de panoja y 

a la madurez fisiológica, observando el color y el tipo de grano. 

 

 Raleo 

Mujica (1997) menciona que se realiza cuando se tiene alta densidad de 

plantas por metro lineal o área de cultivo, en esta labor se descartan las 

plantas más pequeñas, raquíticas, débiles y enfermas. Se realiza 

aproximadamente a los 30 a 45 días después de la emergencia, antes de 

que las plantas alcancen una altura de 20 cm se debe dejar de 15 a 20 

plantas por metro lineal. 



 

28 
 

 Aporque 

Mujica (1997) indica que se hace en forma manual con picotas o 

herramientas parecidas, con yunta o tractor. El aporque permite dar 

mayor fijación a las plantas y controlar las malezas entre los surcos, se 

realiza después del deshierbo. 

 

 Manejo de agua 

Mujica (1997) señala que la lámina de precipitación mínima requerida 

para producir quinua es de 300 a 500 mm; considera a la quinua como 

una planta que soporta déficit severo y prolongado de humedad durante 

las diferentes etapas de su crecimiento y desarrollo; por lo que 

actualmente en muchos periodos de crecimiento. Siendo las fases 

fenológicas de mayor necesidad de agua la germinación, panojamiento y 

floración.  

 

1.8.5 Cosecha 

Mujica (1997) menciona que la cosecha de quinua debe realizarse en el 

debido oportuno, para evitar no solo las pérdidas por efectos adversos del 

clima y ataque de aves sino, el deterioro de la calidad del grano. Si a la 

madurez del cultivo hay un período de humedad ambiental alta (superior 

al 70 %), se produce la germinación de los granos en la panoja, con la 

consiguiente pérdida de la calidad de la cosecha. La quinua debe ser 

cosechada cuando las plantas se hayan defoliado y presenten un color 

amarillo pálido o los granos hayan adquirido una consistencia tal que 

resistan a la presión con las uñas. La cosecha tradicional de quinua en la 

zona andina es totalmente manual cuyas actividades son las siguientes: 



 

29 
 

 Siega o corte 

Mujica (1997) manifiesta que la siega se realiza cuando las plantas hayan 

alcanzado la madurez fisiológica. Esta labor debe efectuarse en las 

mañanas a primera hora, para evitar el desprendimiento de los granos por 

efectos mecánicos del corte y uso de las hoces o segaderas, se 

recomienda hacerlo en horas de la mañana para evitar la caída de los 

granos. 

 

 Emparvado 

Mujica (1997) señala que el emparvado se realiza cuando las plantas 

fueron segadas en la madurez fisiológica, es necesario que estas pierdan 

aún agua para la trilla, por ello se efectúa el emparvado, que consiste en 

formar pequeños montículos con las panojas, debiendo estar las panojas 

en un solo sentido hasta que tengan la humedad conveniente para la trilla, 

para que las lluvias, nevadas o granizadas no malogren  

 

 Trilla 

Mujica (1997) menciona que la trilla se efectúa sacando las panojas secas 

de la parva, la cual se extiende sobre mantas preparadas apropiadamente 

para este fin. En algunos lugares se apisona en un terreno plano. Luego 

se procede a efectuar el golpeo de las panojas colocadas en el suelo en 

forma ordenada, generalmente panoja con panoja, cuyos golpes permitirá 

desprender el grano junto a la broza. 

 



 

30 
 

 Aventado y limpieza del grano 

Mujica (1997) afirma después de la trilla, el grano y la broza fina quedan 

juntos. Esta labor consiste en separar el grano de la broza (fragmentos de 

hojas, pedicelos, perigonio, inflorescencias y pequeñas ramas) 

aprovechando las corrientes de aire, de tal manera que el grano esté 

completamente limpio. 

 

 Secado del grano 

Mujica (1997) menciona cuando la trilla se efectúa con panojas secas, es 

necesario que el grano pierda humedad hasta obtener una humedad 

comercial y permitir su almacenamiento, puesto que al momento de la 

trilla los granos contienen entre un 12 a 15 % de humedad. 

 

 Selección del grano 

Mujica (1997) manifiesta que una vez que el grano está completamente 

seco, se debe proceder a la selección y clasificación del grano, puesto 

que la panoja produce granos grandes, medianos y pequeños.  

 

 Almacenamiento 

Mujica (1997) manifiesta una vez clasificado el grano por tamaños y para 

usos diferenciados, se debe almacenar en lugares frescos, secos y en 

envases apropiados, que eviten la presencia de roedores y polillas, en 

ningún caso usar envases de plástico o polipropileno, puestos que ellos 

facilitan la conservación de humedad, dando olores desapropiados al 

producto. 



 

31 
 

1.9 CONDICIONES AGROECOLÓGICAS 

Mujica (1993) respecto a la ecología del cultivo de la quinua reporta lo 

siguiente: 

 

 Suelo 

Mujica (1993) señala que la quinua prefiere un suelo franco con buen 

drenaje y alto contenido de materia orgánica con pendientes moderadas y 

un contenido medio de nutrientes puesto que la planta es exigente en 

nitrógeno y calcio, moderadamente en fósforo y poco en potasio. 

 

 Luz Solar 

Mujica (1993) indica que la quinua se adapta a varios fotoperiodos, desde 

requerimientos de días cortos para su floración, en Perú, Ecuador y 

Colombia, hasta la insensibilidad a las condiciones de luz para su 

desarrollo en Chile, y las variedades que crecen cerca de la línea 

Ecuatorial son cultivos de días cortos. 

 

 Precipitación 

Suquilanda (2004) manifiesta que las precipitaciones anuales de 600 a 

1000 mm son las más apropiadas para el cultivo de la quinua. La mínima 

precipitación para obtener un buen rendimiento es de 400 mm distribuidos 

durante el ciclo de cultivo, observándose que es un cultivo capaz de 

soportar sequía, pero no en exceso. 

 



 

32 
 

 Altitud 

Mujica (1993) señala en el Perú la quinua crece desde el nivel del mar 

hasta los 4 000 msnm con un rango mayor que otros países, debido a las 

numerosas variedades que posee en comparación con otros países. 

 

 Temperatura 

León (2003) la temperatura óptima para la quinua esta alrededor de 8 a 

15 °C, puede soportar hasta -4 °C, en determinadas etapas fenológicas, 

siendo más tolerante en la ramificación y las más susceptibles la floración 

y relleno de grano. 

 

Mujica (1993) manifiesta que tolera una amplia variedad de climas. La 

planta no se ve afectada por climas fríos (-1 °C) en cualquier etapa de 

su desarrollo, excepto durante la floración son sensibles al frio (el polen 

se esteriliza). Una temperatura media anual de 10 a 18 °C y 

oscilación térmica de 5 a 7 °C son los más adecuados para el cultivo de 

quinua. 

 

1.10 PLAGAS Y ENFERMEDADES 

1.10.1 Plagas 

Bravo y Delgado (1992) indican durante el ciclo vegetativo de la quinua se 

registra 12 plagas fitófagos; estos, ocasionan daños en forma directa 

cortando plantas tiernas, masticando, defoliando hojas, destruyen panojas 

y granos, cuyas plagas se presentan en el cuadro 1.5. 



 

33 
 

Cuadro 1.5: Categorías de plaga en Chenopodium quinoa Willd. 

Nº Nombres científicos/Nombres comunes  Categorías 

1 Eurysacca quinoae "q’hona q’hona"  Clave 

2 Copitarsia turbata "panojero"  Ocasional 

3 Epicauta spp. "llama llama"  Potencial 

4 Epitrix sp. "piki piki"  Potencial 

5 Myzus persicae (Sulzer) "q!homer usa"  Potencial 

6 Macrosiphum euphorbiae "q!homer usa"  Potencial 

7 Liriomyza huidobrensis "mosca minadora"  Potencial 

8 Agrotis sp. "silwi kuru"  Potencial 

9 Feltia sp. "tikuchi"  Potencial 

10 Meloe sp. "uchu kuru", "llama llama kuru"  Potencial 

11 Borogonalia sp. "cigarritas"  Potencial 

12 Bergallia sp. "cigarritas"  Potencial 

13 Perizoma sordescens Dogning “medidores” Potencial 

14 Hymenia sp. “polilla de quinua” Potencial 

15 Paratanus sp. “cigarritas” Potencial 

16 Diabrotica viridula “lorito” Potencial 

 

1.10.2 Enfermedades 

Tapia (1979) afirma que la quinua es infectada por diversos patógenos 

(virus, bacterias, oomicetos y hongos), las enfermedades se clasifican en: 

enfermedades del follaje, tallo y de la raíz. Por el momento el mildiú es la 

enfermedad más importante de la quinua. 

 

Mildiú (Peronospora farinosa) 

Es la enfermedad más importante y común de la quinua, es un parásito 

obligado (biotrófico), miembro de Peronosporales (Oomicetos). La 

enfermedad ataca a hojas, ramas, tallos, inflorescencias, panojas. Infecta 

durante cualquier estado fenológico del cultivo, los daños son mayores en 

plantas jóvenes (ramificación a panojamiento), provoca la defoliación, 

afectando el desarrollo y fructificación de la quinua, las condiciones 

ambientales con alta humedad favorecen el desarrollo del mildiu. 



 

34 
 

1.11 RENDIMIENTO Y PRODUCTIVIDAD 

Apaza (2005) indica que el potencial de rendimiento de grano de quinua 

alcanza hasta 9 000 kg.ha-1 se logra cuando todos los factores de 

crecimiento se dan simultánea y constantemente en su valor óptimo, en el 

curso de las diversas fases del desarrollo. Con adecuadas condiciones de 

cultivo (suelo, humedad, clima, fertilización y labores oportunas), se 

obtiene rendimientos 4 000 kg.ha-1 de acuerdo a la variedad. 

 

El Ministerio de Agricultura y Riego (MINAGRI), afirma que el año 2012 y 

2013 el rendimiento promedio es alrededor de 1 148 y 1 162 kg.ha-1. Se 

destaca el rendimiento del departamento de Arequipa que es 

aproximadamente de 2 834 kg.ha-1 el mejor a nivel nacional. Las cifras 

indican que el 2014 se logró una producción de 114 300 TM. 

 

B. DE LAS MALEZAS 

1.12 Concepto 

La palabra maleza se deriva del latín "malitia" que se traduce como 

"maldad". Se define maleza en el sentido agronómico como “todas 

aquellas plantas que compiten con los cultivos y reducen tanto los 

rendimientos como la calidad de la cosecha, obstaculizando además la 

recolección de la misma”. También las define como “plantas que 

interfieren negativamente con los objetivos o necesidades del hombre” 

(Instituto Colombiano Agropecuario, 1973).   

 



 

35 
 

Helfgott (1986) menciona que las malezas son plantas que crecen donde 

no se desea; son plantas de crecimiento rápido, vigorosos, duras, poseen 

un sistema radicular eficaz, tienen mucha facilidad para retoñar, 

producción abundante de semillas. Por otra parte, son muy rústicos, son 

de gran adaptación a las condiciones ecológicas existentes. La 

competencia es generalmente limitada al suelo, donde las raíces 

compiten entre sí por agua y aumentan en función a la cobertura vegetal. 

 

Pujadas y Hernández (1988) mencionado por García y Fernández (1991) 

señalan que las malezas son plantas que crecen siempre o en forma 

predominante en situaciones marcadamente alteradas por el hombre y 

que resulta no deseable por él en un lugar y momento determinado. 

 

Cerna (1994) afirma que, la maleza es cualquier planta fuera de lugar, de 

modo que las plantas que se cultivan también al estar en un lugar no se 

las desea, son malezas. Para cada cultivo existe un tamaño de población, 

a partir de la cual se establecen las relaciones de competencia. La 

competencia creada por las malezas con relación a los cultivos es mayor 

a su primera etapa, se recomienda su control lo más temprano posible. 

 

Akobundu (1996) menciona que, en las fincas de pequeña escala de los 

países en desarrollo, los agricultores dedican más del 50 % de su tiempo 

al control de malezas, tarea que es hecha sobre todo por las mujeres y los 

niños de su familia pudiendo dedicarse este tiempo a otras actividades 

más productivas. 



 

36 
 

Fernández (2000) ha señalado “maleza” como “aquellas plantas que, en 

un momento o lugar dado y en un número determinado, resultan 

molestas, perjudiciales o indeseables en los cultivos o en cualquier otra 

área o actividad realizada por el hombre”. 

 

1.13 Métodos de control de malezas 

Según Bautista (2010) se conocen los siguientes métodos de control de 

malezas: 

 

1.13.1  Control cultural 

Es el uso de prácticas agronómicas apropiadas para reducir el efecto 

perjudicial de las malezas, entre ellas tenemos: 

 

a. Cultivos adecuados 

Se debe usar semilla certificada de variedades bien adaptadas al suelo y 

clima de la zona, que permitan obtener poblaciones vigorosas de las 

plantas cultivadas.  

 

b. Rotación de cultivos 

Ciertas malezas se asocian y son más comunes en ciertos cultivos que en 

otros. La rotación de cultivos cambia el microambiente en que se 

desarrollan las poblaciones de malezas y por lo tanto impide la 

predominancia de determinadas especies difíciles de controlar.  

 



 

37 
 

c. Inundación 

Las malezas que prosperan mejor en suelos bien drenados y no toleran 

excesos de agua pueden controlarse inundando los campos con una capa 

de 15 a 20 cm de agua, por ejemplo, en el cultivo de arroz sembrados en 

pozas. 

 

d. Fuego 

Se emplea para destruir las partes aéreas secas de las malezas que ya 

han madurado o que se han eliminado mediante la siega o la aspersión 

de productos químicos.  

 

e. Uso de cobertura vegetal 

Consiste en aplicar restos vegetales en el espacio que existe entre los 

surcos de plantas, que además de controlar la presencia de las malezas, 

permite mantener la humedad del suelo por mayor tiempo, beneficiando el 

crecimiento y desarrollo del cultivo. 

  

1.13.2  Control biológico 

Puede definirse como el uso de organismos vivos para el control de 

plagas. Tiene como objetivo reducir las poblaciones de malezas mediante 

enemigos naturales. Estos enemigos naturales son aquellos que atacan 

las malezas, ya sea consumiendo la masa vegetal por el animal liberado 

(usualmente insectos, pero también pueden incluir ácaros, nematodos, 

etc.) o por enfermedades de las plantas, particularmente hongos.  



 

38 
 

1.13.3  Control mecánico 

Las prácticas de producción ejercen una presión de selección en las 

comunidades de malezas y crean condiciones que favorecen o afectan a 

diferentes especies.  

 

La labranza es considerada un factor determinante en el establecimiento 

de malezas. La labranza primaria reduce la densidad de malezas anuales 

al eliminar plántulas en proceso de emergencia y altera las características 

de la superficie del suelo afectando la germinación de las semillas de 

malezas al reducir la cobertura del suelo por residuos vegetales y afectar 

en consecuencia la temperatura y humedad del mismo. El control 

mecánico involucra labores de aradura, cultivo y corte con implementos 

de labranza, así como deshierbes manuales con hoces, lampas, palas, 

azadones y machetes, etc.  

 

1.13.4  Control químico 

Se basa en el uso de herbicidas que son productos químicos del grupo de 

los pesticidas que se emplean para destruir, controlar o impedir el 

desarrollo de plantas consideradas como malezas. Los herbicidas se 

aplican al follaje de las plantas o al suelo de donde son absorbidos por las 

raíces. En ambos casos puede afectar malezas que están germinando o 

actúan sobre plantas establecidas. 

 



 

39 
 

C. DEL HERBICIDA  

1.14 HERBICIDA AGRÍCOLA CENTURIÓN (Clethodim) 

a) Identidad 

Nombre común  : Clethodim 

Grupo químico  : Ariloxyfenoxypropionato 

Clase de uso   : Herbicida 

Fórmula empírica  : C17H26CIO3S 

Peso molecular  : 359.9 g/mol 

Concentración  : Clethodim 125 g/L 

Formulación   : Concentrado emulsionable – EC 

Estructura molecular : 

 

b) Propiedades fisicoquímicas de Centurión 

Aspecto    : Líquido ámbar cristalino, aromático 

Estabilidad en almacenamiento : Hasta 2 años de vida útil 

Densidad    : 0.925 – 0.935 g/mL 

pH     : 3.2 

Inflamabilidad   : No inflamable 

Explosividad    : No explosivo 

Corrosividad    : No corrosivo 



 

40 
 

c) Mecanismo de acción 

Es un herbicida post emergente que controla un amplio rango de 

gramíneas anuales y perennes con alto grado de selectividad. Es 

rápidamente absorbido por las hojas de las gramíneas y luego 

transportado a los meristemos o yemas de crecimiento donde ejerce 

acción herbicida. 

 

d) Modo de acción 

Clethodim, ingrediente activo del CENTURIÓN, actúa bloqueando la 

biosíntesis de los lípidos que son componentes de las membranas 

celulares, de este modo, inhibe la división celular de los meristemos, 

provocando la muerte de los mismos. 

 

e) Comportamiento en el suelo, agua y aire 

La degradación de clethodim en el suelo posee una vida media (tiempo 

que tarda en desaparecer la mitad de un compuesto en el ambiente) de 1 

a 3 días, lo cual indica que no es persistente en el suelo. El coeficiente de 

adsorción de carbono orgánico, Koces 4º mL/g lo que señala que es una 

molécula móvil. 

 

Clethodim es estable en el agua, debido a que se hidroliza con vida 

media, DT50 28, 300 días y 310 a pH 5, 7 y 9 respectivamente. La 

fotólisis en el agua tiene una vida media de 1.7 a 9.6 días, lo que indica 

que su degradación es moderada. 



 

41 
 

Clethodim posee una presión de vapor de >1 X      Pa y una constante 

de Henry igual a 6.6648 x      Pa         que indican que no se 

volatiliza cuando está como partícula aislada y tampoco lo hace cuando 

está en solución acuosa, reduciendo el riesgo de contaminación del aire. 

 

f) Condiciones de aplicación 

 CENTURIÓN puede ser aplicado con pulverizadores de mochila o 

equipos montados al tractor. 

 No se recomienda mezclarlo con fertilizantes ni productos de reacción 

alcalina. 

 Las gramíneas cultivadas no son tolerantes a CENTURIÓN, por el 

contrario, los cultivos de hoja ancha muestran una excelente tolerancia. 

Los mejores resultados se obtienen cuando las malezas están en pleno 

crecimiento activo, bajo buenas condiciones de humedad y no pasan de 

20 a 30 cm de altura. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

42 
 

 

 

 

 

 

 

 

CAPÍTULO II 

MATERIALES Y MÉTODOS 

 

2.1 UBICACIÓN DEL EXPERIMENTO 

El trabajo de investigación se realizó en el Centro Experimental de 

Canaán de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad Nacional 

de San Cristóbal de Huamanga, ubicado en el distrito de Andrés Avelino 

Cáceres Dorregaray, provincia de Huamanga y departamento de 

Ayacucho, el mismo que se encuentra una altitud de 2 735 msnm cuyas 

coordenadas son: 13o 08’ 05’’ Latitud Sur y de 74o 32’ 00’’ Longitud Oeste. 

 

Según Cornejo (1983) esta zona de vida está calificada como Estepa 

Espinoza-Montano Bajo Subtropical. 

 

2.2 ANTECEDENTES DEL CAMPO EXPERIMENTAL. 

En la parcela destinada para el presente experimento se sembró maíz 

morado en la campaña agrícola 2012 – 2013, utilizando una fórmula de  

80 - 80 - 40 de NPK. 



 

43 
 

2.3 CONDICIONES CLIMÁTICAS 

Los datos climáticos (temperatura y precipitación) de la campaña agrícola 

2013 - 2014, fueron tomadas de la Estación Meteorológica del INIA Sub 

Gerencia de Operaciones y Mantenimiento (OPEMAN), situado en las 

coordenadas 13o 10’ 00.06’’ latitud sur y 74o 12’ 22.92’’ longitud oeste, a 

una altitud de 2 735 msnm, datos que sirvieron para la elaboración del 

balance hídrico de acuerdo a la metodología propuesto por la Oficina 

Nacional de Evaluación de Recursos Naturales del Perú (ONERN) basado 

en (Holdridge, 1980). 

 

En el cuadro 2.1 se reportan datos meteorológicos correspondientes a la 

campaña agrícola setiembre 2013 a agosto de 2014, donde se registraron 

precipitaciones, temperaturas máximas, media y mínimas mensuales. En 

base a estos datos se procedió a calcular el balance hídrico. En el gráfico 

2.1 se registró la temperatura máxima promedio mensual de 24.75 °C, la 

temperatura media de 17.18 °C y la mínima de 9.62 °C, respectivamente. 

 

En el balance hídrico correspondiente según comportamiento 

meteorológico los meses más húmedos fueron noviembre y diciembre de 

2013, luego de enero a marzo de 2014 y un déficit de humedad en los 

meses de setiembre y octubre de 2013; mientras en el año 2014 los 

meses de abril, mayo, junio, julio y agosto. 

 

 



 

44 
 

Cuadro 2.1:  Temperatura máxima, media, mínima, precipitación y balance hídrico correspondiente a la campaña agrícola 

2013 - 2014 de la Estación Meteorológica de Canaán - INIA Ayacucho 

Distrito  : Andres A. Cáceres D. 
   

Altitud : 2 735 msnm 
 

Provincia : Huamanga 
     

Latitud : 13° 10' 00.16'' S 

Departamento : Ayacucho 
     

Longitud : 74° 12' 22.92'' W 

               
               

AÑO 2013 2014 
TOTAL PROM. 

MESES SET OCT NOV DIC ENE FEB MAR ABR MAY JUN JUL AGO 

T° Máxima (°C) 25,64 24,79 26,13 23,54 23,98 24,66 23,68 24,39 25,17 25,48 25,00 24,54   24,75 

T° Mínima (°C) 9,13 10,75 10,57 10,39 10,78 11,14 10,57 9,73 8,80 7,43 7,80 8,29   9,62 

T° Media (°C) 17,39 17,77 18,35 16,97 17,38 17,90 17,13 17,06 16,99 16,46 16,40 16,42   17,18 

Factor 4,80 4,96 4,80 4,96 4,96 4,48 4,96 4,80 4,96 4,80 4,96 4,96     

ETP (mm) 83,45 88,14 88,08 84,15 86,20 80,19 84,94 81,89 84,25 78,98 81,34 81,42 1.003,03 0,61 

Precipitación 
(mm) 

14,90 51,70 60,10 127,70 117,20 71,00 118,90 31,40 15,20 0,00 2,60 3,10 613,80   

ETP Ajustado 
(mm) 

51,07 53,94 53,90 51,49 52,75 49,07 51,98 50,11 51,55 48,33 49,78 49,82 
  

  

H del suelo (mm) -36,17 -2,24 6,20 76,21 64,45 21,93 66,92 -18,71 -36,35 -48,33 -47,18 
-

46,72   
  

Déficit (mm) -36,17 -2,24                -18,71 -36,35 -48,33 -47,18 
-

46,72   
  

Exceso (mm)       6,20 76,21 64,45 21,93 66,92                    

   

Cuadro 2.1:

Distrito : Andres A. Cáceres D. Altitud : 2 735 msnm

Provincia : Huamanga Latitud : 13° 10' 00.16'' S

Departamento : Ayacucho Longitud : 74° 12' 22.92'' W

AÑO

MESES SET OCT NOV DIC ENE FEB MAR ABR MAY JUN JUL AGO

T° Máxima (°C) 25.64 24.79 26.13 23.54 23.98 24.66 23.68 24.39 25.17 25.48 25.00 24.54 24.75

T° Mínima (°C) 9.13 10.75 10.57 10.39 10.78 11.14 10.57 9.73 8.80 7.43 7.80 8.29 9.62

T° Media (°C) 17.39 17.77 18.35 16.97 17.38 17.90 17.13 17.06 16.99 16.46 16.40 16.42 17.18

Factor 4.80 4.96 4.80 4.96 4.96 4.48 4.96 4.80 4.96 4.80 4.96 4.96

ETP (mm) 83.45 88.14 88.08 84.15 86.20 80.19 84.94 81.89 84.25 78.98 81.34 81.42 1,003.03 0.61

Precipitación (mm) 14.90 51.70 60.10 127.70 117.20 71.00 118.90 31.40 15.20 0.00 2.60 3.10 613.80

ETP Ajustado (mm) 51.07 53.94 53.90 51.49 52.75 49.07 51.98 50.11 51.55 48.33 49.78 49.82

Déficit (mm) -36.17 -2.24           -18.71 -36.35 -48.33 -47.18 -46.72

Exceso (mm)     6.20 76.21 64.45 21.93 66.92           

Factor de corrección, se obtiene cuando el clima de la localidad es seco, y es para ajustar toda y c/u de las ETP mensual.

Fc = 0.61

Temperatura máxima, media, mínima, precipitación y balance hídrico correspondiente a la campaña 

agrícola 2013 - 2014 de la Estación Meteorológica de Canaán - INIA Ayacucho

TOTAL PROM.
2013 2014

               

             
= 

       

       



 

45 
 

 

Gráfico 2.1: Diagrama Ombrotérmico de la Temperatura y Precipitación (Canaán 2 750 msnm. Ayacucho 2013 - 2014) 

 



 

46 
 

2.4 ANÁLISIS FÍSICO - QUÍMICO DEL SUELO 

Con la finalidad de conocer las características físico – químico del suelo, 

se tomó muestras de suelo a 20 cm de profundidad del terreno 

experimental, obteniendo una muestra compuesta de 1.0 kg el cual se 

remitió al Laboratorio de Suelos “Nicolás Roulet” del Programa de 

Investigación en Pastos y Ganadería de la Universidad Nacional de San 

Cristóbal de Huamanga, cuyos resultados se muestran en el cuadro 2.2. 

 

Cuadro 2.2: Características físicas y químicas del suelo de la zona de 

estudio. Canaán, 2 735 msnm - Ayacucho (2014). 

COMPONENTES VALOR MÉTODO INTERPRETACIÓN 

Análisis Químico 

pH H2O 7.15 Potenciómetro Ligeramente alcalino 

Materia orgánica (%) 2.77 Walkley y Black Medio 

N-Total (%) 0.13 Kjeldahl Medio 

P-disponible (ppm) 38.79 Bray-Kurtz Alto 

K-disponible (ppm) 317 Turbidimétrico Alto 

Análisis Físico 

Arena (%) 42.0 Hidrómetro - 

Limo (%) 18.0 Hidrómetro - 

Arcilla (%) 40.0 Hidrómetro - 

Clase textural   Franco arcilloso 

Fuente: Laboratorio de Suelos “Nicolás Roulet” del Programa de Investigación en Pastos    
y Ganadería de la UNSCH.   

 

En el Cuadro 2.2 se observa que el pH 7.15 corresponde a un suelo 

ligeramente alcalino, el porcentaje de materia orgánica 2.77 % 

corresponde a un nivel medio; el nitrógeno total (0.13 %) es medio; el 

fósforo total disponible con 38.79 ppm es alto y el potasio disponible con 

317 ppm es alto. (Ibáñez y Aguirre 1983) según el porcentaje de arena, 

limo y arcilla corresponde a un suelo de clase textural franco arcilloso. 



 

47 
 

2.5 CARACTERÍSTICAS DEL CULTIVO 

En el presente experimento se empleó la variedad INIA 420 - Negra 

Collana. Vidal Apaza Mamani (2012) coordinador de cultivos andinos de 

Illpa, explica que el INIA 420 - Negra Collana, su origen está dado en una 

amplia base genética. Es el resultado generado por el método de 

mejoramiento de selección panoja surco, a partir de la combinación de 13 

variedades de quinuas de color, que van desde el marrón hasta las más 

oscuras tonalidades de quinuas llamadas “jiwras”, caracterizada por 

presentar un Periodo vegetativo: 115 – 138 días (precoz) Tipo de 

panoja: glomerulada Longitud de panoja: 30 – 38 cm Altura de planta: 

1.15 – 1.20 m Rendimiento: 2.5 – 3.0 t.ha-1 Tolerante: mildiu Color de 

grano: negro brillante Tamaño de grano: 1.60 mm Contenido de 

saponina: 0.015 a 0.018 % y el Peso de 1000 semillas: 2.03 g. 

 

2.6 TRATAMIENTOS EN ESTUDIO 

Los tratamientos considerados en el presente estudio son: 

T1 :  Regulación con 0.6 lt.ha-1 de centurión 

T2 :  Regulación con 0.3 lt.ha-1 de centurión 

T3 :  Regulación con 0.9 lt.ha-1 de centurión 

T4 :  Regulación mecánica de malezas a los 14 dds 

T5 :  Regulación mecánica de malezas a los 21 dds  

T6 :  Regulación mecánica de malezas a los 28 dds 

T7 :  Regulación mecánica de malezas a los 35 dds 

T8 :  Regulación mecánica continua de malezas 

T9 :  Sin regulación de malezas 



 

48 
 

2.7 DISEÑO EXPERIMENTAL Y ANÁLISIS ESTADÍSTICO 

El Diseño Experimental utilizado fue el Diseño Bloque Completo 

Randomizado (DBCR), con 9 tratamientos y 3 repeticiones, 

conduciéndose en total 27 unidades experimentales tal como se muestra 

en el croquis del campo experimental. Estos fueron asignados 

aleatoriamente en las parcelas dentro de cada bloque.  

 

El análisis estadístico consistió en el análisis de variancia y a la prueba de 

contraste de Tukey (0.05) de los caracteres que resulten significativos. 

 

En cuanto al modelo aditivo lineal, a cada observación le corresponde una 

ecuación lineal de la siguiente forma:  

Yij  =  µ + Ti + βj + Єij 

Dónde: 

Yij : Es una observación cualquiera del i-ésimo tratamiento y j-ésimo 

bloque. 

 µ : Promedio de las observaciones. 

Ti : Efecto del i-ésimo tratamiento. 

βj : Efecto del j-ésimo bloque. 

Єij : Error experimental. 

 



 

49 
 

2.8 CROQUIS DEL CAMPO EXPERIMENTAL  

 

 Unidad Experimental 

La unidad experimental estuvo conformada por cinco surcos, de 4 m de 

largo, 3.50 m ancho, 0.70 m distancia entre surcos, en el raleo se dejó 

aproximadamente entre 15 y 20 plantas por metro lineal.  

 

4 m

3.5 m

31.5 m

T7 T3 T9 T6 T2 T5 T4 T1

T9T3T8T7 T2 T6T5 T1

T8 T9T1 T2T3 T6T4T7

1.5 m

1.5 m

4 m

4 m

3.5 m

T8

T4

T5



 

50 
 

 Descripción del campo experimental  

a) Parcelas 

N° de sub parcelas por bloque  : 09 

Ancho de sub parcelas                           : 3.50 m 

Largo de sub parcelas                            : 4.0 m 

Área total de las sub parcelas  : 14.0 m2   

Distanciamiento entre surcos  : 0.70 m 

Número de surcos por sub parcelas : 05 unid.  

b) Bloques 

Nº de Bloques del experimento  : 03 

Largo del bloque    : 31.5 m 

Ancho del bloque    : 4.0 m 

Área del bloque    : 126.0 m2 

c) Calles 

Número de calles    : 02 

Largo de la calle    : 31.5 m 

Ancho de la calle    : 1.50 m 

Área de la calle    : 47.25 m2 

d) Campo experimental 

Largo      : 31.5 m 

Ancho      : 15.0 m 

Área efectiva del experimento  : 472.5 m2 

 

 



 

51 
 

2.9  INSTALACIÓN Y CONDUCCIÓN DEL EXPERIMENTO 

a. Preparación del terreno y surcado 

El 10 de febrero del 2014 se realizó el arado del suelo, utilizando un 

tractor agrícola a una profundidad de 0.20 m y el 16 de diciembre del 

2014, se procedió con el mullido y el nivelado del suelo utilizando una 

rastra de discos. El surcado se realizó el 20 de febrero del 2014 con 

tractor agrícola a un distanciamiento de 0.7 m entre surcos. 

 

b. Demarcación y estacado del campo experimental 

El estacado y la demarcación correspondiente se realizaron el 26 de 

febrero del 2014 de acuerdo al croquis del experimento utilizando cordel, 

wincha y estacas con los que se procedió a demarcar las parcelas, calles 

y bloques. 

 

c. Abonamiento 

Se realizó el 26 de febrero del 2014, se incorporaron los abonos de 

acuerdo al análisis de suelo obtenido, previa a la siembra se mezcló los 

fertilizantes aplicando al fondo del surco a chorro continuo, luego de la 

aplicación se procedió con el tapado con una capa para evitar el contacto 

con la semilla. La fórmula utilizada fue de 120 - 60 - 30 de N, P2O5 y K2O; 

la misma que se calculó en base al requerimiento nutricional del cultivo y 

el contenido de nutrientes en el suelo (análisis de suelo). El nitrógeno se 

aplicó la mitad de la dosis a la siembra y la otra mitad al aporque. Todo el 

fósforo y potasio se aplicaron a la siembra. Los abonos utilizados fueron 

fosfato di amónico, urea y cloruro de potasio.  



 

52 
 

d. Siembra 

Se llevó a cabo el 26 de febrero del 2014 con una densidad de siembra de 

8 kg.ha-1, depositando la semilla al costillar del surco a chorro continuo. 

 

e. Riegos 

El primer riego fue ligero a los 6 días después a la siembra (04 de marzo), 

luego el 13 de marzo del 2014. Durante la conducción se realizaron riegos 

según la capacidad de campo en 8 oportunidades, se realizaron en las 

siguientes fechas: 23 y 31 de marzo, el 09, 19, y 28 de abril; y finalmente 

el 08, 18 y 28 de mayo del 2014. 

 

f. Control de malezas 

Se realizó de acuerdo a los tratamientos establecidos. En la regulación 

mecánica de malezas durante el periodo vegetativo del cultivo se 

realizaron de acuerdo a los tratamientos establecidos, mientras en la 

regulación con el producto químico se realizó el 29 de marzo del 2014 

teniendo como factor de regulación el centurión a una dosis de 0.3, 0.6 y 

0.9 lt.ha-1.  

 

g. Raleo   

Se realizó antes del aporque el 02 de abril del 2014 a los 35 días después 

de la siembra, dejando aproximadamente 15 a 20 plantas por metro lineal, 

en esta labor se aprovechó para eliminar las plantas atípicas. 

 



 

53 
 

h. Aporque 

El aporque se realizó el 16 de abril del 2014 a los 49 días después de la 

siembra cuando las plantas de quinua alcanzaron 30 cm 

aproximadamente en cada unidad experimental, a excepción del T9 (sin 

regulación de malezas). Esta actividad se realizó, con la finalidad de 

proporcionar mayor estabilidad al cultivo, airear el suelo. También se 

complementó la segunda parte de fertilización del nitrógeno. 

 

i. Control fitosanitario 

Fueron dos enfermedades que se presentaron con mayor incidencia la 

chupadera fungosa del genero Fusarium y el mildiu (Peronospora 

farinosa); para chupadera se aplicó 30 gr de Rhizolex-T/mochila de 15 lt a 

9 días después de siembra; luego en dos oportunidades se utilizó 

Fordazim + Rovral. Para el mildiu se asperjo con Ridomil Gold 68 WP 

(Mancozeb + Metalaxil) a la dosis de 2.0 kg.ha-1 en 3 oportunidades. 

 

Para el control de plagas como la Diabrótica viridula, Epicauta spp. y 

Eschitocerca americana, se utilizó insecticida comercial “Cyperklin 25” a 

los 15 y 31 dds. Como abonos foliares se utilizó Wuxal doble. Los 

productos asperjados fueron preparados con adherente humectante 

Aderal. 

 

j. Cosecha 

La cosecha se realizó el 23 de junio del 2014 a los 120 días después de la 

siembra, cuando el cultivo alcanzó la madurez de cosecha, lo que se 



 

54 
 

evidenció con los granos maduros resistentes al rayado de la uña (14 a 16 

% de humedad). Esta labor se efectuó en forma manual con ayuda de 

hoces, cortando las panojas de cada unidad experimental con su 

respectiva identificación de tratamiento por cada parcela, luego llevado al 

secadero. Posteriormente se trilló y venteó los granos.  

 

2.10  VARIABLES EVALUADAS  

2.10.1  DE LA MALEZA 

a. Población e identificación de malezas 

Se determinó utilizando un muestreador de 0.50 x 0.50 m el cual se 

colocó en los surcos laterales de cada unidad experimental, a excepción 

de la regulación mecánica continua de maleza (T8), se contó todas las 

malezas que se encontraron dentro del muestreador, luego se identificó y 

clasificó por especie y familia, posteriormente fueron llevados por relación 

a población de malezas por hectárea. 

 

b. Altura de malezas 

En el T9 (sin regulación de malezas) se evaluó la altura promedio de las 

malezas en cm, midiendo con la ayuda de un flexómetro desde el cuello 

de las plantas hasta la parte terminal, a partir de los 14 a 70 días después 

de la siembra. 

 

c. Peso de biomasa fresca y seca de las malezas 

El pesaje de la biomasa fresca se efectuó en laboratorio, donde se tomó 

una muestra de 100 gramos de maleza a los 30 y 60 días después de la 



 

55 
 

siembra del T9 (sin regulación de malezas). Para determinar el peso seco 

se llevó la muestra a estufa por 24 horas a 60 °C de temperatura hasta 

obtener un peso constante, obteniéndose por relación el peso de biomasa 

seca. Esté análisis se efectuó con la finalidad de conocer el potencial 

productivo de la maleza. 

 

2.10.2  DEL CULTIVO 

a. Caracteres de precocidad 

a.1. Días a la emergencia 

Se registró el número de días después de la siembra, cuando el 50 % del 

área sembrada presenten plántulas brotadas. 

 

a.2. Días a la formación de panoja 

Se registró los días transcurridos a partir de la siembra, cuando más del 

50 % de plantas de la parcela iniciaron la formación de la panoja principal. 

 

a.3. Días a la floración 

Se registró el número de días después de la siembra, cuando más del    

50 % de las plantas presentaron panojas con flores abiertas (antesis). 

 

a.4. Días a la madurez fisiológica 

Se registró los días transcurridos desde la siembra hasta que más del    

50 % de las plantas mostraban semillas que presentaron resistencia al ser 

presionado con las uñas. 



 

56 
 

a.5. Días a la madurez de cosecha 

Se registró los días transcurridos cuando más del 50 % de las plantas 

presentan defoliación de hojas y amarillamiento de tallos. 

 

b. Caracteres de productividad 

b.1. Altura de planta (cm) 

Para determinar la altura de planta, se tomaron 10 plantas al azar durante 

la madurez fisiológica, por cada unidad experimental las cuales se 

midieron con una wincha en cm desde el cuello de la planta hasta el punto 

de inserción de la panoja, en el momento de la madurez fisiológica. 

 

b.2. Longitud de panoja (cm) 

Se evaluó 10 plantas muestreadas al azar de los surcos centrales, la 

medida se hizo en cm desde la base de la panoja hasta el ápice, en el 

momento de madurez fisiológica de cada unidad experimental. 

 

b.3. Peso de 1000 semillas 

Se tomó 03 muestras de 100 semillas por tratamiento, pesados en 

balanza de precisión, luego se infirió al peso de 1000 semillas. 

 

b.4. Rendimiento de grano (kg.ha-1) 

Se cosechó los tres surcos centrales de cada unidad experimental, 

dejando 0.50 en la base y cabecera de la parcela por efecto de bordes, 

las plantas cosechadas de un área de 6.3 m2 se trilló y venteó para pesar 

en una balanza de precisión, registrándose en kilógramos. Finalmente se 

infirió el rendimiento de quinua en kilogramos por hectárea (kg.ha-1).  



 

57 
 

2.11. RENTABILIDAD ECONÓMICA 

Para el cálculo del Índice de Rentabilidad (IR) se utilizó la siguiente 

relación: 

I.R. = (utilidad / costo de producción)  

 

Para el análisis de rentabilidad del cultivo de quinua, se utilizó los costos 

unitarios de producción, en función a una hectárea, considerando todas 

las labores de manejo, alquiler de maquinaria, insumos utilizados y 

transporte, con sus respectivas valorizaciones, con la cual se obtuvo los 

costos directos de producción; también se consideró los gastos 

administrativos y los imprevistos, considerados costos indirectos. Con los 

costos directos y los indirectos se determinó los costos de producción.  

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

58 
 

 

 

 

 

 

 

 

CAPÍTULO III 

RESULTADOS Y DISCUSIÓN 

 

3.1 DE LA MALEZA 

3.1.1 Población de malezas de los tratamientos 

Cuadro 3.1: Total de malezas en los tratamientos y testigo, un día antes 

de la aplicación del clethodim, en dds en el cultivo de quinua. 

Canaán, 2 735 msnm.  

Trat. Descripción 

N° de plantas.ha¯¹ 

Días después de la siembra (dds) 

14 21 28 30 35 

T1 
Regulación con 0.6 lt.ha

-1 

de centurión 
      5 182 667   

T2 
Regulación con 0.3 lt.ha

-1 

de centurión 
  

 
  5 169 453   

T3 
Regulación con 0.9 lt.ha

-1 

de centurión 
  

 
  4 952 000   

T4 
Regulación mecánica de 
malezas a los 14 dds 

2 386 177 
 

      

T5 
Regulación mecánica de 
malezas a los 21 dds 

  3 696 000       

T6 
Regulación mecánica de 
malezas a los 28 dds 

  
 

4 794 667     

T7 
Regulación mecánica de 
malezas a los 35 dds 

  
 

    5 894 853 

T9 
Sin regulación de 
malezas 

      5 188 173   

 

En el cuadro 3.1 se muestra la población total promedio de malezas 

presentes en el campo experimental en los diferentes tiempos de 



 

59 
 

evaluación, un día antes de la aplicación de los tratamientos donde se 

muestra la gran variación en la cantidad del número de malezas, debido a 

la distribución irregular de la presencia de semillas de malezas. También 

se observa mayor población de malezas cuando el periodo de evaluación 

es más prolongado, en nuestro caso ocurre a los 30 y 35 días después de 

la siembra. Este incremento se debe a que las malezas siguen 

germinando y se implantan en el suelo al no haber labores agrícolas que 

interfieran con su crecimiento y desarrollo. 

 

En forma general se puede manifestar que la diferencia de poblaciones se 

debe a que las semillas de malezas no se encuentran dispersas en forma 

homogénea, mucho menos en la misma profundidad en el campo de 

cultivo, a la vez que estas semillas tienen mecanismos fisiológicos que les 

permite una germinación des uniforme según encuentren las condiciones 

favorables lo cual le permite la sucesión de más de una germinación 

dentro del ciclo vegetativo.  

 

Bautista (2010) señala que numerosas especies poseen semillas que se 

mantienen en latencia durante más de 10 años. Esta longevidad unida a 

la gran cantidad de semilla origina enormes reservas de semillas viables 

en el suelo agrícola, generando según el factor ambiental una 

germinación escalonada. 

 



 

60 
 

Por otro lado, también se tiene que los valores de la población de malezas 

están dentro de los márgenes mostrados por diferentes autores como 

Cabrera (2015) y Huauya (2013). 

 

Las malezas casi siempre aparecen en un complejo mixto de especies 

que permanecen en equilibrio hasta que el ecosistema es afectado por 

prácticas de labranza u otras medidas agronómicas. La alteración de la 

flora natural conduce a la eliminación de algunas especies y la 

predominancia de otras, que son resistentes o adaptadas a las medidas 

de control usadas; por esto la evaluación sistemática de la población de 

malezas se hace indispensable en las áreas de cultivo como guía de 

medidas de control a desarrollar. 

 

Cuadro 3.2: Total de malezas en los tratamientos y testigo después de 14 

días de la aplicación del clethodim, en dds en el cultivo de 

quinua. Canaán, 2 735 msnm. 

Trat. Descripción 

N° de plantas.ha¯¹ 

Días después de la siembra (dds) 

28 35 42 44 49 

T1 
Regulación con 0.6 lt.ha

-1 

de centurión 
      

4 249 786 
(82 %) 

  

T2 
Regulación con 0.3 lt.ha

-1 

de centurión 
  

 
  

4 652 507 
(90 %) 

  

T3 
Regulación con 0.9 lt.ha

-1 

de centurión 
  

 
  

3 713 999 
(75 %) 

  

T4 
Regulación mecánica de 
malezas a los 14 dds 

990 263 
(41%)  

      

T5 
Regulación mecánica de 
malezas a los 21 dds 

  
739 199 

(20 %) 
      

T6 
Regulación mecánica de 
malezas a los 28 dds 

  
 

623 306 
(13 %) 

    

T7 
Regulación mecánica de 
malezas a los 35 dds 

  
 

    
471 588 

 (8 %) 

T9 Sin regulación de malezas       5 313 523   

 



 

61 
 

En el cuadro 3.2 se muestra la población total promedio de malezas 

presentes en el campo experimental después de 14 días de efectuado el 

control respectivo, el porcentaje de reducción es variable, siendo más 

drástico en la evaluación a los 49 y 42 días después de la siembra. La 

mayor reducción del número de malezas se observa con la regulación 

mecánica en comparación con la regulación con centurión que muestra 

poca reducción en el número de malezas, esto indica claramente que el 

centurión muestra poco efecto sobre el número de malezas. El centurión 

mayormente se usa para malezas de hojas angostas. Se observa una 

menor población de malezas con la regulación mecánico a los a los 35 

dds y evaluados a los 49 dds con una población promedio de 471 588 

pl.ha-1, la segunda opción se da a los 28 dds y evaluados a los 42 dds con 

promedio de malezas de 623 306 pl.ha-1. El tratamiento sin regulación de 

malezas evaluados a los 44 dds muestra una población de 5 313 523 

pl.ha-1, esta población es ligeramente superior a lo encontrado a los 30 

dds. 

 

Cabrera (2015) en un experimento realizado en el Centro Experimental de 

Canaán-UNSCH en el cultivo de quinua, identificó a los 14 dds una 

población total de 5 943 367 pl.ha-1 y a los 28 dds una población de 5 116 

667 pl.ha-1. El mismo autor encontró con la aplicación de glifosato 1.0 y 

3.0 lt.ha-1 identificó a los 42 dds una población total de 3 940 000 y           

3 800 000 pl.ha-1; y con la aplicación de glufosinato de amonio 3.0 y 4.0 

lt.ha-1 identificó a los 42 dds una población total de 2 000 000 y 1 913 400 

pl.ha-1.  



 

62 
 

Estos resultados comparados con los obtenidos donde se aplicó 

centurión, muestran resultados casi similares; por tanto, se puede indicar 

que la regulación química en el cultivo de quinua no es muy efectiva en la 

reducción de la población de malezas, no existe en la actualidad un 

herbicida selectivo para la quinua. 



 

63 
 

3.1.2 Población total por especies y familias por cada tratamiento 

Cuadro 3.3: Población de malezas y promedio porcentual por especies de los tratamientos estudiados, un día antes de la 

aplicación del clethodim, en el cultivo de quinua. Canaán, 2735 msnm. 

 

3.1.2   Población total por especies y familias por cada tratamiento

Cuadro 3.3: Población de malezas y promedio porcentual por especies de los tratamientos estudiados, un día antes de la aplicación del clethodim, en el cultivo de quinua. Canaán, 2 735 msnm.

Sin regulación 

0.6 lt.ha¯¹ % 0.3 lt.ha¯¹ % 0.9 lt.ha¯¹ % 14 % 21 % 28 % 35 % de malezas %

1 Cyperus rotundus Coquito Cyperaceae 1022667 19.7 951667 18.4 944000 19.1 208700 8.7 629333 17.0 826667 17.2 1011307 17.2 844133 16.3

2 Raphanus raphanistrum Nabo silvestre Cruciferaceae 979333 18.9 997347 19.3 888000 17.9 229850 9.6 634667 17.2 800000 16.7 1051227 17.8 616867 11.9

3 Bidens pilosa Sillcau Asteraceae 788667 15.2 730880 14.1 664000 13.4 151850 6.4 474667 12.8 762667 15.9 658680 11.2 798680 15.4

4 Malvastrum sp. Ruporupo Malvaceae 615 333 11.9 609 067 11.8 520 000 10.5 165 399 6.9 410 667 11.1 501 333 10.5 698 600 11.9 532453 10.3

5 Echinochloa colonum Arrocillo Poaceae 520 000 10.0 502 480 9.7 472 000 9.5 102 015 4.3 480 000 13.0 464 000 9.7 525 613 8.9 577 907 11.1

6 Medicago hispida L. Trébol carretilla Leguminosaeae 156 000 3.0 190 333 3.7 376 000 7.6 1 080 000 45.3 170 667 4.6 362 667 7.6 439 120 7.4 370 120 7.1

7 Amaranthus spinosus Atajo Amarantaceae 398 667 7.7 479 640 9.3 472 000 9.5 150 015 6.3 394 667 10.7 250 667 5.2 485 693 8.2 422 067 8.1

8 Acalipha arvensis Mondonguito Euphorbiaceae 468 000 9.0 319 760 6.2 296 000 6.0 126 000 5.3 234 667 6.3 426 667 8.9 552 227 9.4 499 987 9.6

9 Eleusine indica Pata de gallina Poaceae 182 000 3.5 266 467 5.2 264 000 5.3 72 350 3.0 208 000 5.6 362 667 7.6 445 773 7.6 474 013 9.1

10 Chenopodium album Quinua silvestre Chenopodiaceae 17 333 0.3 76 133 1.5 16 000 0.3 60 000 2.5 32 000 0.9 16 000 0.3 6 653 0.1 32 467 0.6

11 Portulaca oleracea Verdolaga Portulaceae 34 667 0.7 45 680 0.9 16 000 0.3 40 000 1.7 26 667 0.7 21 333 0.4 19 960 0.3 0 0.0

12 Oxalis curniculata Vinagrillo Oxilidaceae 0 0 0 0.0 24 000 0.5 0 0.0 0 0.0 0 0.0 0 0.0 19 480 0.4

5 182 667 100.0 5 169 453 100.0 4 952 000 100.0 2 386 177 100.0 3 696 000 100.0 4 794 667 100.0 5 894 853 100.0 5 188 173 100.0

Nombre Científico Nombre Común Familia

Testigo

N° de plantas.ha¯¹

Dosis de centurión Regulación mecánico ddsN°

TOTAL

Malezas



 

64 
 

El cuadro 3.3 muestra la población de malezas por especies un día antes 

de la aplicación de los tratamientos. La distribución porcentual de las 

especies de malezas es variable, entre las malezas con mayor proporción 

están las especies (Cyperus rotundus) coquito, (Raphanus raphanistrum) 

nabo silvestre y (Bidens pilosa) sillcau con 804 809, 774 661 y 628 761 

pl.ha-1, que en general se encuentran en un 45.9 %, estas especies 

mencionadas se van incrementando en el tiempo mostrando de este 

modo su agresividad frente al cultivo de quinua. En el trabajo se encontró 

12 especies con diferentes poblaciones porcentuales. 

 

Cabrera (2015) en un experimento realizado en Canaán-UNSCH en el 

cultivo de quinua identificó a los 14 dds un total de 18 especies con una 

población de 5 943 367 pl.ha-1, siendo las más representativas Anoda 

cristata, Cyperus rotundus y Amaranthus spinosus con 1 451 111,            

1 123 333 y 1 071 111 pl.ha-1, respectivamente. A los 28 dds registró un 

total de 20 especies con una población de 5 116 667 pl.ha-1, siendo las 

más representativas Anoda cristata, Cyperus rotundus y Amaranthus 

spinosus con 1 033 333, 905 556 y 807 778 pl.ha-1, respectivamente y las 

especies de menor población fueron Acalipha arvensis, Chenopodium 

album y Bidens tripartita con 7 778, 8 667 y 3 333 pl.ha-1.  

 

Huauya (2013) en un experimento realizado en Canaán-UNSCH en el 

cultivo de quinua, identificó a los 14 dds un total de 16 especies con una 

población de 3 746 111 pl.ha-1, donde las especies predominantes fueron 

Cyperus rotundus, Echinochloa colonum y Raphanus raphanistrum con 



 

65 
 

851 667, 631 667 y 574 444 pl.ha-1, respectivamente. A los 28 dds registró 

un total de 14 especies con una población de 935 000 pl.ha-1, siendo las 

más representativas Cyperus rotundus, Echinoloa colonum y Raphanus 

rapanistrum con 229 444, 91 667 y 183 333 pl.ha-1, respectivamente. 

 

Al respecto Bautista (2010) menciona que los competidores exitosos son 

aquellas plantas que germinan rápidamente, tienen mayor velocidad de 

emergencia, mayor desarrollo radicular y de la parte aérea, tallos con 

buena ramificación. También la Organización de las Naciones Unidas 

para la Agricultura y la Alimentación (1986) reporta que la competencia 

inter-específica es más intensa cuando estas especies son de morfología 

similar y tienen las mismas necesidades de agua, nutrientes, luz, CO2, 

hábitos de desarrollo y métodos de reproducción. 

 

Tiscornia (1989) menciona que los deshierbes tienen una influencia 

importantísima sobre el buen desarrollo de los cultivos, ya que con ella se 

consigue simultáneamente destruir las malezas que impiden el buen 

desarrollo de las plantas cultivadas y con ello también conservar mejor la 

humedad del suelo para impedir una excesiva evaporación. 

 

Como se puede observar durante la evaluación en el presente 

experimento en comparación con los autores mencionados, la población 

de malezas y las especies no se asemejan, esto debido a la distribución 

variable de las especies de malezas, además la época de siembra, 

fertilidad del suelo, diferentes condiciones climáticas y las características 



 

66 
 

reproductivas de las malezas. Sin embargo, se puede mencionar que 

Cyperus rotundus y Raphanus raphanistrum son los que tiene mayor 

población.   

 

En resumen las variaciones que existe en la población de malezas en el 

presente trabajo y con respecto a otros trabajos conducidos en años 

anteriores se deben a las características fisiológicas de cada especie, las 

cuales tienden a adaptarse a la manera como se lleva acabo el manejo 

agronómico de los cultivos en este Centro Experimental, observándose 

que uno de su capacidad principal de persistencia es la germinación 

escalonada, la variabilidad genética y la elevada producción de semillas, 

es favorecido por las condiciones climáticas de precipitación periódica y 

temperatura apropiada. Esta situación hace que la población de malezas 

varié en el tiempo y espacio.  

 

3.1.3  Altura promedio de malezas (cm) en el tratamiento sin 

regulación de malezas (T9). Canaán, 2 735 msnm. 

El gráfico 3.1 muestra la altura promedio de las malezas evaluadas en el 

tratamiento sin regulación de malezas (T9) en el cultivo de la quinua, 

donde durante el periodo de evaluación se observó que se produce un 

incremento de la altura de las malezas conforme avanza el tiempo con 

una tendencia lineal. Las especies que alcanzaron mayores alturas fueron 

Raphanus raphanistrum y Cyperus rotundus, siendo las más competitivas 

y produjeran mayor sombra proyectada, arquitecturas más ramificadas, 

mayor biomasa y mayor superficie foliar, cabe destacar que en número 



 

67 
 

fueron superior a Bidens pilosa, Malvastrum sp, Acalipha arvensis y resto 

de malezas encontrados en el campo experimental; por lo tanto fueron 

estas malezas que interfirieron en el crecimiento y desarrollo del cultivo y 

demás especies de malezas quienes obstruyeron el paso de la luz hacia 

estas últimas reduciendo así la absorción de energía para la fotosíntesis. 

 

Cabrera (2015) encontró a los 28, 42 y 56 dds que las malezas alcanzan 

una altura aproximada de 13.0, 27.9 y 17.2 cm respectivamente. 

Comparando la altura a los 28 y 56 dds de nuestro trabajo, es mayor con 

15.6 y 24.6 cm y siendo de menor altura a los 42 dds con 22.5 cm. 

 

Huauya (2013) a la 4ta, 6ta y 8va SDS encontró una altura aproximada de 

malezas de 18.21, 25.71 y 12.83 cm respectivamente. Comparando la 

altura a la 4ta y 6ta semana de este trabajo es menor con 15.6 y 22.5 cm 

y siendo de mayor altura de la 8va semana con 24.6 cm. 

 

Las malezas que son de mayor altura compiten con el cultivo con mayor 

fuerza en comparación con malezas que tienen menor altura y entre los 

daños que la maleza ocasiona deben considerarse, la disminución en la 

calidad del grano, la contaminación de lotes de producción de semilla, la 

dificultad en el manejo y distribución del agua de riego y la depreciación 

de los lotes agrícolas infestados con malas hierbas. 



 

68 
 

 

Gráfico 3.1: Altura promedio de malezas en el tratamiento sin regulación de 

malezas (T9) a los 14, 21, 28, 35, 42, 49, 56, 63 y 70 dds en el 

cultivo de quinua. Canaán, 2 735 msnm.   

 

Helfgott (1986) menciona que malezas que prosperan bien y tienen mayor 

altura, son aquellos que tienen una mayor escala de tolerancia y que está 

determinada genéticamente, con la posibilidad de aprovechar al máximo 

las condiciones ambientales en relación al cultivo. 

 

García y Fernández (1991) sostiene que las malezas tienen una 

variabilidad genética, gran vigor y mecanismos morfológicos o fisiológicos 

que dan una mayor competitividad en mayor desarrollo radicular, altura, 

superficie foliar y eficiencia fotosintética. 

 

Cerna (1994) menciona que el desarrollo de las partes aéreas les permite 

una mayor área fotosintética y capacidad para crear sombra retardando el 



 

69 
 

crecimiento de otras malezas o del cultivo mismo. De igual forma poseen 

alelopatía, que es la acción inhibidora ejercida de las plantas a través de 

la producción de sustancias químicas sobre otras especies, ésta 

producción es realizada por las propias malezas o por microorganismos. 

 

3.1.4  Biomasa fresca y seca de las malezas en el tratamiento sin 

regulación de malezas (T9). Canaán, 2 735 msnm.  

El gráfico 3.2 muestra la biomasa fresca de la maleza a los 30 y 60 días 

después de la siembra, en el tratamiento sin regulación de malezas, 

mostrando un valor a los 30 días después de la siembra de 33 733.3 

kg.ha-1 y a los 60 días después de la siembra llega a 55 647 kg.ha-1, las 

malezas son un conjunto de especies que están en competencia con una 

sola especie que es la quinua, como consecuencia el cultivo mostrará 

menor vigor, altura y desarrollo por acción alelopática de las malezas. 

Este potencial productivo de la biomasa fresca de la maleza representa 

un indicativo de valor perjudicial para el crecimiento y desarrollo del 

cultivo, se debe indicar también la existencia de una gran variabilidad en 

el peso de las malezas en cada etapa de evaluación, debido básicamente 

a la diversidad de especies de malezas y a la gran precocidad de algunas 

de ellas. 

 

Cerna (1994) menciona que las malezas herbáceas poseen mayor 

capacidad de absorción de agua en etapas jóvenes que en fases de 

reproducción.   



 

70 
 

 

Gráfico 3.2: Rendimiento de biomasa fresca y seca (kg.ha-1) de las malezas a 

los 30 y 60 dds en el tratamiento sin regulación de malezas. 

Canaán, 2 735 msnm. 

 

La biomasa fresca de la maleza es un componente importante en la 

relación con el cultivo, por competir por los elementos indispensables para 

el crecimiento y desarrollo de las plantas, como el agua, luz, nutrientes y 

espacio. La cantidad de la biomasa fresca de las malezas indica el 

potencial del daño que pueden ocasionar al cultivo. En el gráfico 

mencionado también se observa la biomasa seca de la maleza, en esta 

se nota la proporcionalidad de biomasa seca obtenida en la estufa lo que 

arrojó un mayor valor a los 60 dds de 7 %, frente a los valores de 

humedad donde las malezas tienen un gran porcentaje (93 %). 

 

El incremento del peso de la biomasa fresca y seca es como respuesta a 

la interacción de las variables del factor climático como: la luminosidad, 



 

71 
 

temperatura, radiación solar, lluvias, etc. y la absorción de los nutrientes 

por el cultivo que determinan los cambios fenológicos de la planta, en 

base a las características de las malezas. 

 

Helfgott (1986) menciona que el consumo de agua por las malezas es 

mayor, en muchos casos con mayor rapidez que el cultivo, ya que las 

malezas requieren de mayor cantidad de agua para producir una unidad 

de biomasa seca. Este parámetro es de gran importancia debido a que 

indica en la maleza una fuerte actividad asimiladora.  

 

Cabrera (2015) en Canaán a 2 735 msnm en el tratamiento sin control de 

malezas en el cultivo de quinua, encontró un incremento de biomasa 

fresca de las malezas de la 5ta a la 7ma SDS, con 18 273 a 28 075 kg.ha-1, 

y biomasa seca de 1 343 a 2 415 kg.ha-1, resultados que muestran la 

relación de biomasa seca y contenido alto de humedad de las malezas. 

Los resultados mostrados son inferiores a los obtenidos en el presente 

trabajo de investigación.  

 

Cerna (1994) menciona que las malezas herbáceas poseen mayor 

capacidad de absorción de agua en etapas jóvenes que en fases de 

reproducción. 

 

Gonzales (2011) en Canaán a 2 735 msnm con coberturas vegetales en 

el cultivo de quinua, encontró a la 6ta y 8va SDS 10.15 y 13.44 % de 

biomasa seca. Estos resultados son superiores a los tratamientos sin 

intervención de herbicidas. 



 

72 
 

3.2 DEL CULTIVO 

3.2.1 VARIABLES DE PRECOCIDAD 

El cuadro 3.4 muestra las variables de precocidad basadas en los estados 

fenológicos del cultivo de quinua variedad Negra Collana, observándose 

la precocidad varietal que llega a la madurez fisiológica entre los 100 a 

110 días después de la siembra y la madurez de cosecha entre los 115 a 

120 días después de la siembra. La precocidad es una gran ventaja y su 

respuesta se da en mayor precocidad en los valles interandinos, este 

atributo es gran ventaja que permite la planificación de la siembra. La 

emergencia se inició a los 4 días después de la siembra y con el 75 % de 

emergencia a los 6 días después de la siembra, el panojamiento se da 

entre los 45 a 50 días después de la siembra, el inicio de floración se 

observa entre 60 a 65 días después de la siembra. Se ha observado que 

no hay influencia para ningún tratamiento. Esta variedad es considerada 

precoz por Quispe, Villantoy, Yzarra y Núñez (2013). 

 

INIA (2013) reporta que la variedad Negra Collana es una variedad 

precoz, básicamente debido a la variación de los factores medio 

ambientales, con un periodo vegetativo de 130 días, el resultado es 

similar a los resultados obtenidos en el Centro Experimental de Canaán. 

 

 

 

 



 

73 
 

Cuadro 3.4: Estados fenológicos del cultivo de quinua, variedad Negra 

Collana. Canaán, 2 735 msnm. 

T
ra

ta
m

ie
n

to
s
 

Variedad Negra Collana 

E
m

e
rg

e
n

c
ia

 

P
a

n
o

ja
m

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n

to
 

In
ic

io
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n
 

M
a

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z
 

fi
s
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ló
g

ic
a
 

M
a

d
u

re
z
 d

e
 

c
o

s
e
c
h

a
 

 

T1 

T2 

T3 

T4 

T5 

T6 

T7 

T8 

T9 

 

4 - 6 

4 - 6 

4 - 6 

4 - 6 

4 - 6 

4 - 6 

4 - 6 

4 - 6 

4 - 6 

 

45 - 50 

45 - 50 

45 - 50 

45 - 50 

45 - 50 

45 - 50 

45 - 50 

45 - 50 

45 - 50 

 

60 - 65 

60 - 65 

60 - 65 

60 - 65 

60 - 65 

60 - 65 

60 - 65 

60 - 65 

60 - 65 

 

100 - 110 

100 - 110 

100 - 110 

100 - 110 

100 - 110 

100 - 110 

100 - 110 

100 - 110 

100 - 110 

 

115 - 120 

115 - 120 

115 - 120 

115 - 120 

115 - 120 

115 - 120 

115 - 120 

115 - 120 

115 - 120 

 

El cuadro 3.4 muestra que no existen diferencias por efecto del 

tratamiento con herbicida y de los otros tratamientos.  

 

Cabrera (2015) en Canaán a 2 735 msnm reporta que la variedad Negra 

Collana alcanza la madurez fisiológica a los 112 – 122 días después de la 

siembra. En un trabajo en el Valle Yucaes a 2 535 msnm por Pérez (2014) 

menciona que la madurez fisiológica para la variedad Negra Collana se 

alcanza a los 115 – 125 días después de la siembra. Estos dos últimos 

resultados son parecidos con el resultado obtenido en el presente trabajo 

que permite afirmar que la precocidad se comporta según altitud.  



 

74 
 

(Quispe, et al., 2013) en el I Encuentro Regional de Quinua determinaron 

la madurez fisiológica contabilizando el número de días transcurridos 

desde la siembra, hasta que el 50 % de las plantas de la accesión 

manifieste resistencia al aplastamiento de sus granos, en la parte media 

de la panoja.  

 

3.2.2 VARIABLES DE PRODUCTIVIDAD 

3.2.2.1  Altura de planta 

Cuadro 3.5: Análisis de variancia para la altura de planta de quinua a la 

madurez fisiológica. Canaán, 2 735 msnm. 

F. Variación GL SC CM Fc Pr>F 

Bloque 

Tratamiento 

Reg. M. vs Reg. Q. 

Test. vs Reg. Q. y M. 

RMC vs Reg. Q. y M.  

Error  

Total 

2 

8 

1 

1 

1 

16 

 26 

53.63 

1215.85 

421.73 

507.23 

43.01 

27.04 

1296.52 

  26.81 

151.98 

421.73 

507.23 

43.01 

1.69 

15.87 

89.94 

249.57 

300.17 

25.45 

0.0002 ** 

<.0001 ** 

<.0001 ** 

<.0001 ** 

0.0001 ** 

C.V. = 1.39 % 

 

En el cuadro 3.5 se tiene el ANVA para la altura de planta evaluado a la 

madurez fisiológica en los diferentes tratamientos, donde se observa que 

existe alta significación estadística en la fuente de variación de bloques y 

tratamientos. El coeficiente de variación (1.39 %) es un valor de buena 

precisión que nos permite una buena confianza en los resultados. 

 

Las pruebas de contraste de mayor importancia es la comparación de la 

regulación química y la regulación mecánica, notándose alta significación 



 

75 
 

en esta comparación, donde la regulación mecánica supera a la 

regulación química. Esta superioridad se debe a que los tratamientos con 

el centurión no tuvieron efecto en la regulación de las malezas de hoja 

ancha, que es la mayor población de malezas en los suelos de Canaán. 

El centurión es un herbicida para malezas de hoja delgada. 

 

Cuadro 3.6: Prueba de Tukey para la altura de planta de quinua. Canaán, 

2 735 msnm. 

Tratamientos Media DLS 

Regulación mecánica continua de malezas 103.00  a   

Regulación mecánica de malezas a los 28 dds 102.00  a   b 

 Regulación mecánica de malezas a los 35 dds 98.67    b   c 

 Regulación mecánica de malezas a los 21 dds 95.33          c  d     

Regulación mecánica de malezas a los 14 dds 93.67              d                 e 

Regulación con 0.9 lt.ha-1 de